Изобретение относится к микробиологической промьгашенности, в частности к получению целлюлолитических ферментов микробного происхождения, используемых в процессе осахарива- ния целлюлозы.
Цель изобретения - штамм микроскопического гриба т продуцент термостабильных высокоактивных целлюлаз, катализирующих превращение целлюлозы в глюкозу.
Предлагаемый штамм Aspergillus terreus АТ-490 получен в результате ультрафиолетового облучения исходного штамма Aspergillus terreus 17Р дозой 6400 Дж/м .
Чтамм депонирован в Центральном музее промьшшенных микроорганизмов Института ВНИИгенетика, коллекционный номер ЦМПМ F-232.
Предлагаемый штамм имеет следующу характеристику.
Культурально-морфологические признаки.
Культура хорошо развивается на среде Чапека-Докса, модифицированной среде Чапека-Докса с добавлением кукурузного экстракта и полоски фильтровальной бумаги на поверхности агара, сусло-агаре, а также на природных питательных субстратах.
Среда Чапека-Докса. На 5-е сутки колонии желтоватые, постепенно пёреходявще в бежевый цвет, бархатистые, плоские. Обратная сторона бес цветная. Мицелий гриба имеет тонкие гифы, слабо септированные или совсем не септированные. Средняя толщина гиф 3-4 мк, Конидиеносцы гладкие, бесцветные, до I00 мк в длину и 6- 8 мк в ширину. Пузыри полусферические 15-18 мк в диаметре. Их верхняя часть покрыта стеригмами. Стеригмы двухъярусные,обычно тесно прилегающие, стерип-ш первого яруса (3-4) 2 мк, второго яруса (5-6)-2 мк. Конидиии эллиптические, гладкие, встречаются по отдельности или соединены в цепочки. Диаметр конидии 2- 3 мк.
Физиолого-биохимические признаки.
Штамм хорошо усваивает лактозу, глюкозу, ксилозу, мальтозу, сахарозу и целлюлозу. Слабее усваивает араби- нозу, галактозу, юуахмал и маннит. Не усваивает рамиозу, рафинозу, ман- нозу и сорбит. Из источников азота хорошо усваивает органические и неорганические соединения азота. Наиболее интенсивный рост наблюдается на нитратах. Усваивает разнообразные фосфорные соединения, однако более
1Штенсивно одно- и двузамещенный фос форнокислый калий. Штамм высокую эн- доглюканазную (р-1 ,4-1 -глюкан-4- -глюканогидролазы) и целлобиазную активности выявляет в пределах рН
4,5 - 4,6. Оптимальная температура для роста и биосинтеза . Штамм гидролизует целлюлозу (разные целлюлозные субстраты). Наблюдается высокая эндоглюканазная и целлобиазная
активности на среде, содержащей сено в качестве единственного источника углерода.
Целлюлаза предлагаемого штамма термостабильна - после ведения ферментативной реакции при 70°С в течение часа активность почти полностью сохраняется.
Для размножения штамма применяют модифицированную агаризованную среду
Чапека-Докса состава, %: NaNOg 0,3; ,0,2; MgSO -yHjO 0,05; кукурузный экстракт 1,5; агар-агар 2,0, полоска фильтровальной бумаги на поверхности агара, рН среды 6,3.
Посевным материалом служит суспензия 20- суточной культуры штамма, выращенной на модифицированной среде Чапека-Докса. Для получения иеллюлаз используют жидкую питательную среду
состава, %: NaNO,0,30; КН,РО 0,2; MgSO, 0,05; сено 2; кукурузный экстракт 1,5, рН среды 4,5.
150 мл питательной среды в конических колбах емкостью 250 мп стерилизуют 40 мин при 0,7 атм. Максимальная активность целлюлаз отмечается при выращивании штамма на термостатированной качалке, делающей 270 об/мин при 40 С в течение 96 ч и равна:
активность эндоглюканазы по КМЦ
20 ед/мп, активность по фильтровальной бумаге 0,5 ед/мп, по целлобиа- зе 0,5 ед/мл.
Эндоглюканазную активность определяют по действию фермента на Na КМЦ следующим образом, I мл 1,5%- ного раствора субстрата в 0,05 М ацетатном буфере (рН 4,7) и 1 мл культуральной жидкости инкубируют в
течение 30 мин при 60 С. За единицу активности принимают количество фермента, образующее 1 мкмоль восста- навливакмцих Сахаров при 1%-ной кон3
центрации субстрата в минуту. Количество восстанавливающих сахароз определяют по методу Сомоджи-Нель- сона.
Активность по фильтровальной бумаге определяют следующим образом. 50 мг фильтровальной бумаги Ватман (16 см) в 1 мл 0,05 ацетатного буфера (рН 4,7) и 1 мл культуральной жидкости инкубируют течение часа при 55°С. За единицу активности принимают количество фемента, образующего 1 мкмоль восстанавливающих Сахаров в минуту. Количество восстанавливающих сахароз определяют по методу Сомоджи-Нель- сона.
Целлобиазную активность определ ют следующим образом. 0,2 мл моль целлобиазы, 1,6 мл 0,05М ацетатного буфера (рН 4,7) и 0,2 мл раствора культуральной жидкости инкубируют в течение
10 мин при 55 С. За единицу активности принимают количество фермента, образующее 2 мкмоль глюкозы за I мин при концентрации целлобиазы 2 10 моль. Определение глюкозы проводят глюкоэооксидазным методом.
Кроме высокоактивных целлюлаз предлагаемый продуцент образует богатую белком (35-40%) биомассу.
Пример 1. Штамм Aspergillus „terreus АТ-490 выращивают на агари- зованной среде, содержащей, %: кукурузный экстракт 1,5; NaNO 0,3; 0,2; MgSO -7H20 0,05, рН и полоску фильтровальной бумаги на поверхности агара, рН среды 6,3. Культивирование проводят в течение 72 ч при 40 С. Суспензией спор, полученной смывом с указанной среды, засевают колбы емкостью 250 мл, содержащие 150 мл среды состава, %: сено 2,0, кукурузный экстракт 1,5; NaNO-j 0,3; KH-jP04 0,2; MgSO 7Н20 0,05, рН среды 4,5. Выращивание культуры проводят на круговой качалке (270 об/мин) в течение 72 ч при
s 0 5
0
5
0
5
0
5
70 С
40°С. Мицелий с остатками сена отделяют, и в культуральной жидкости определяют активности целлюлаз по указанным методам. Активность эндоглю- каназы по Na КМЦ 14,5 ед/мп, активность по фильтровальной бумаге 0,32 ед/мл; по целлобиозе 0,35 ед/мл.
Пример 2. Штамм Aspergillus terreus АТ-490 выращивают согласно примеру 1 в течение 96 ч. Активность целлюлаз определяют аналогично примеру 1 .
Активности ферментов в культуральной жидкости составляют, ед/мл: эндоглюконаза по Na КМЦ 20; активность по фильтровальной бумаге 0,5; по хлопку 0,9-1,0; целлобиаза 0,5 ед/мл; ксиланаза 7-8.
При выдерживании препарата при
в течение часа активности почти полностью сохраняются.
Мутант Asp. terreus АТ-490 обладает не только набором всех ферментов целлюлазного комплекса, но также и высокой ксиланазной активностью. В препаратах целлюлаз ксиланаза обеспечивает более полное расщепление сельскохозяйственных отходов до глюкозы. Ксиланазы гидролизуют геми- целлгапо.зу, которая содержится в растительных и природных субстратах, таких как солома, древесина и т.д.
Пример 3. Штамм Asp. terreus АТ-490 выращивают в колбах Эрленмей- ера емкостью 250 мл, содержащей 100 мл среды состава, г/л водопроводной воды: древесные опилки, измельченные на шаровой мельнице до размеров 0,2-1,0 мм 20,0; NaNO 3,0; 2,0; MgS0.7H,,0 0,5, рН„, 4,2- 4,6, в течение 96 ч, на круговой качалке (230 об/мин)при 40 С.
Культуральную жидкость отделяют от биомассы центрифугированием и опре деляют активность по указанным методам.
Активность ферментов представлена в таблице.
название | год | авторы | номер документа |
---|---|---|---|
Штамм гриба АLLеSснеRIа теRRеSтRIS - продуцент целлюлаз | 1989 |
|
SU1643608A1 |
ШТАММ МИКРОСКОПИЧЕСКОГО ГРИБА TRICHODERMA VIRIDE BOCG 63/300 - ПРОДУЦЕНТ ЦЕЛЛЮЛАЗ И ГЕМИЦЕЛЛЮЛАЗ | 2001 |
|
RU2213138C2 |
Питательная среда для культивирования продуцентов целлюлолитических ферментов и ксиланазы | 1982 |
|
SU1090713A1 |
ШТАММ ГРИБА ASPERGILLUS SPECIES - ПРОДУЦЕНТ БЕЛКА И ЦЕЛЛЮЛАЗ | 1992 |
|
RU2029784C1 |
Штамм гриба ASpeRGILLUS oRYZae (АнLвURG) сонN - продуцент ксиланазы | 1988 |
|
SU1641887A1 |
Штамм гриба ASpeRGILLUS FUмIGатUS-продуцент целлюлазы | 1986 |
|
SU1440920A1 |
ШТАММ ГРИБА ASPERGILLUS TERREUS 17р — ПРОДУЦЕНТ ЦЕЛЛЮЛОЛИТИЧЕСКИХ ФЕРМЕНТОВ | 1969 |
|
SU255890A1 |
ШТАММ МИЦЕЛИАЛЬНОГО ГРИБА PENICILLIUM FUNICULOSUM - ПРОДУЦЕНТ КОМПЛЕКСА КАРБОГИДРАЗ, СОДЕРЖАЩЕГО ЦЕЛЛЮЛАЗЫ, β-ГЛЮКАНАЗЫ, β-ГЛЮКОЗИДАЗЫ, КСИЛАНАЗЫ И КСИЛОГЛЮКАНАЗЫ, И СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ФЕРМЕНТНОГО ПРЕПАРАТА КОМПЛЕКСА КАРБОГИДРАЗ ДЛЯ ОСАХАРИВАНИЯ ЛИГНОЦЕЛЛЮЛОЗНЫХ МАТЕРИАЛОВ | 2006 |
|
RU2323254C2 |
Штамм гриба @ @ 3 @ -106-продуцент целлюлазы | 1983 |
|
SU1125247A1 |
Штамм гриба ТRIсноDеRма VIRIDe - продуцент внеклеточной целлюлазы и ксиланазы | 1988 |
|
SU1525208A1 |
Штамм Aspergillus terreusAT- 490 (коллекция Центрального музея промышленных микроорганизмов ВНИИ- генетика, коллекционный номер ЦМПМ F-232) - продуцент целлюпаэ. (Л
Способ получения целлюлолитических ферментов | 1981 |
|
SU994555A1 |
Способ гальванического снятия позолоты с серебряных изделий без заметного изменения их формы | 1923 |
|
SU12A1 |
Штамм гриба @ @ 3 @ -106-продуцент целлюлазы | 1983 |
|
SU1125247A1 |
Способ гальванического снятия позолоты с серебряных изделий без заметного изменения их формы | 1923 |
|
SU12A1 |
Логинова Л.Г., Гужова Э.П., Бурденко Л.Г | |||
Прикладная биохимия и микробиология | |||
Чугунный экономайзер с вертикально-расположенными трубами с поперечными ребрами | 1911 |
|
SU1978A1 |
Авторы
Даты
1986-08-23—Публикация
1984-06-27—Подача