Изобретение относится к сельскому хозяйству и может быть использовано в селекции и семеноводстве, в исследованиях по фитопатологии и морфогенезу растений.
Цель изобретения - оздоровление исходного материала для размножения при сохранении его жизнеспособности.
Пример. Проводится размножение и оздоровление чая сорта Грузинский № 6, Неодревесневшие побеги стерилизуют 12 с в растворе, содержащем по объему 1,5% перекиси водорода и 50% этанола (остальное вода), а затем 6 мин в 0,1%-ном водном растворе диоцида. При этом от 1000 фрагментов с почками получают 937 эксплантаПоложительный эффект достигается только при последовательном применении двух стерилизующихся растворов: перекиси водорода с этанолом и диоцида. При этом оптимальные концентрации составляют для перекиси водорода 1,5-2,0%, этанола 50-60%, диоцида 0,05-0,2%, а экспозиция для первого стерилизующего раствора составляет 10-15 с, для второго 5-10 мин или 300- 600 с (табл. 2). При уменьшении концентрации стерилентов выход асептического материала значительно снижается, а жизнетов, свободных от фитопатогенной инфекции, т. е. инфицированность составляет всего 6,3%. Жизнеспособность неинфицированных эксплантатов, которая определяется по отсутствию повреждений, вызванных стерилен- тами, и способности к пролиферации, составляет 92,7% (из 937 эксплантатов 869 жизнеспособны). При стерилизации черенков отдельными стерилентами (перекисью
водорода, этанолом и диоцидом) в рекомендуемых дозах и экспозициях получить достаточное количество неинфицированного жизнеспособного материала не удается.
Данные о влиянии отдельных стерилен- тов на инфицированность и жизнеспособность эксплантатов чая приведена в табл. I.
Таблица 1
способность эксплантатов практически не увеличивается. Повыщение концентрации
стерилентов или увеличение времени выдерживания черенков в стерилизующих растворах приводит к резкому снижению и изне- способности эксплантатов без существенного увеличения выхода асептического мате- риала.
Данные о влиянии концентрации и экспозиции двух стерилизующих растворов на инфицированность и жизнеспособность эксплантатов чая приведены в табл. 2.
Стерильные эксплантаты культивируют в пробирках с агаризованными средами MS, 85, SN, в которых концентрацию сахарозы доводят до 30 г/л, а рН до 5,5. В среды BS и SH, не содержащие нитрата аммония, добавляют его в количестве 0,25 г/л. В качестве фитогормона используют БАП в концентрации 1 мг/л. При снижении его конСрок образования розеток из почек, сут
Среднее количество побегов на 1 эксплантат
Таблица 2
центрации увеличиваются сроки образования адвентивных почек и уменьшается их количество (табл. 3). Увеличение концент- рации БАП приводит к ингибированию развития побегов из почек.
Данные о влиянии различных концентраций БАП на морфогенез в культуре чая приведена в табл. 3.
Таблица 3
2220
45
2А
30
1,6 5,1 5,7 5,2
.1
Эксплантаты культивируют при люминесцентном освещении 3000 лк. При освещении ниже 2000 лк почкование замедляется на 2-3 недели, а при освещенности выще 4000 лк развитие побегов из,почек ингиби- руется. Эксплантаты культивируют при 16- часовом фотопериоде (8 ч темнота). При 12-14 ч/сут. фотопериоде образование почек и развитие из них побегов замедляется на 15-20 дней, а при фотопериоде более 18 ч/сут различий в почковании и развитии побегов по сравнению с 16-18 ч/сут фотопериодом не отмечается, однако расход электРасход исходных чере;.:- -ков на получение 1000 саженцов
Коэффициент размножеФрагмент ы с почками помещают для дальнейшего размножения на питательные среды того же состава. Во втором цикле выращивания (50 сут) каждый эксплантат также образует по 3-6 побегов. Всего за 100 дней культивирования от каждого исходного эксплантата получают в среднем по 162 побега. Не выявляются существенные различия в почковании и развитии побегов при использовании питательных сред различного состава (В., MS, SH).
Для получения растений побеги пересаживают на питательные среды без БАП, где они в течение 3 недель укореняются и образуют по 4-5 листьев. Затем полученные растения высаживают в почву, укрывают на 2 педели полиэтиленовой пленкой и после этого выращивают в обычных условиях.
Составитель С. Куваева
Редактор О. Ьугир Техред И. ВересКорректор М. Шароши
Заказ 1833/2Тираж 630Подписное
ВЯИИПИ Государственно1-о комитета СССР по делам изобретений и открытий
1 13035, Д1осква, Ж -35, Раушская .наб., д. 4/5 Производстве 1но-1|о. 1Играфическое предприятие, г. Ужгород, у.п. Проектная, 4
роэнергии существенно повьипается. Эксплантаты инкубируют при 24±1°С. При температуре ниже 22 С развитие почек и побегов замедляется на 10-14 дней, а при тем- нературе ниже 6°С полностью прекращается. Температура выше 28°С ингибирует развитие почек н побегов,-а при 32-34°С эксплантаты погибают.
Сравнительная характеристика эффек- тивности размножения чая традиционным и предлагаемым способом (в расчете на 1000 саженцев) приведена в табл. 4.
т а Г) л и ц а l
Растения нор.мально растут и развиваются, свободны от фитопатогенной инфекции и морфологически не отличаются от исходного клона.
Формула изобретения
Способ размножения чая in vitro, включающий вычленение эксплантатов, их стери-.
лизацию и культивирование на питательной среде, отличающийся тем, что, с целью оздоровления исходного материала для размножения при сохранении его жизнеспособности стерилизацию эксплантатов осуплествляют FiyTCM их помещения в водный раствор, содержащий 1,5-2,0% перекиси водорода н 50-60% этанола, на 10-15 с, а затем в 0,05-0,20%-ный раствор диоцида на 5 10 мин.
название | год | авторы | номер документа |
---|---|---|---|
Способ получения растений-регенерантов чая | 1988 |
|
SU1621825A1 |
Способ размножения винограда | 1989 |
|
SU1695853A1 |
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ РАСТЕНИЙ РАПСА IN VITRO | 2008 |
|
RU2374834C1 |
Способ размножения винограда IN VIтRо | 1987 |
|
SU1601117A1 |
Способ выращивания голубики узколистной (Vaccinium angustifolium Ait.) | 2024 |
|
RU2825762C1 |
СПОСОБ УСКОРЕННОГО СОЗДАНИЯ БЕЗВИРУСНОЙ РОСТКОВОЙ КУЛЬТУРЫ IN VITRO НОВЫХ СОРТОВ КАРТОФЕЛЯ | 2002 |
|
RU2242118C2 |
Способ микроклонального размножения гибридов осины | 1988 |
|
SU1581741A1 |
Способ клонального микроразмножения гибридов карельской березы | 1990 |
|
SU1752284A1 |
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ОЗДОРОВЛЕННОГО IN VITRO ПОСАДОЧНОГО МАТЕРИАЛА GERBERA JAMESONII BOLUS | 1996 |
|
RU2152150C1 |
Способ микроклонального размножения лиственницы | 1988 |
|
SU1571064A1 |
Изобретение относится к сельскому хозяйству. Целью изобретения является оздоровление исходного материала для размножения при сохранении его жизнеспособности. Вычленяют эксплантанты и их в водный раствор, содержащий 1,5-2,0% переки-си водорода и 50-60% этанола на с. Затем эксплантанты помещают в 0,05-0,20%-нык водный раствор диоцида на 5-10 мин. Эксплантанты культивируют при люминесцентном освещении 3000 лк, 16-часовом фотопериоде и . 4 табл. со Ч СО
Способ размножения люцерны | 1977 |
|
SU679190A1 |
Печь для непрерывного получения сернистого натрия | 1921 |
|
SU1A1 |
Авторы
Даты
1987-05-23—Публикация
1985-01-10—Подача