Изобретеиие относится к гибридом- ной технологии и может быть использовано для идентификации антигена группы крови Ы1 па эритроцитах быка.
Цель нзоОретения - получение штампа культивируемых клеток, продуцирун- njtx моноклональные антитела (монАт) .против антигена II эритроцитов быка,
Цтамм получают следующим образом„
Клетки мышиной пиеломы Sp 2/0, устойчивой к иг/мл бромистого эгидия (Ьр EBR-5) , гиОридируют с по- моцью ПЭГ 1000 с клетками селезенки мыши линии Balb/c, иммунизированной
эритроцитами быка, несущими антигенный фактор II4 наряду с другими Схема иммунизации: 107 эритроцитов/мышь внутрибрюшинно (в/б) - интервал 21 день - 5x105 эритроцитов/мыль в/б - через 4 дня мыль забивают„
В результате тестирования полученных гибридных культур по признаку продукции антител против антиге на Н и последующего их клонирования отбирают птамм, продуцирующий монАТ против антигенного фактора Н . Клетки данного штамма прививают мышам линии Balb/c и получают асцит,
СП
ьз
со
3
используемый в качестве реагента для типирования эритроцитов по антигену 11 о
Полученный штамм хранится в Спе- циализированной коллекции клеточных культур Института цитологии АН СССР под номером ВСКК(И) K«264D.
Культуральные свойства.
Итамм культивируют на ростовой среде Игла в модификации Дальбекко (ДНЕМ) с добавлением 10% сыворотки эмбриона коровы, а также 1 мМ заменимых аминокислот, 1 мМ пирувата натрия, 2 мМ глугамина, 2-мер- каптоэтанола и 40 ед„/мл гентамици на о
Культивирование проводят при 37 С
в инкубаторе с содержанием 5-8% CQj или в герметических флаконах в тер- мостате без подачи CO«0 Способ культивирования суспензионный Кратность рассева 1:3 при пересеве через 48 ч„ Посевная доза клеток-150 тыс .клеток/мл, а максимальная плотность популяции 600 тыссклеток/мл. При росте на указанной среде клетки птамма имеют округлую формус Время удвоения популяции 36 ч„ Клонирование клеток проводят в 96 ячеечных платах предельным разведением с использованием в качестве фидерного слоя макрофагов мышей При посеве 3-4 клеток в лунку эффективность клонирования 70%.
Криоконсервацию проводят в сыво- ротке эмбрионов коров с добавлением 10% диметилсульфоксида (ДМ80) при концентрации 1x10 клеток/мл. Жизнеспособность клеток при размораживании 75-80%.
Прививка клеток штамма D 264 син- генным мышам вызывает у них образование асцитной опухоли, сопровождающейся выделением асцитной нидкости в количестве от 1 до 8 мл. В асцитной жидкости содержатся специфические монАТ к Н - антигенному фактору крови быка о Способность в продукции монАТ клеткам птамма D 264 сохраняет- ся на протяжении трех месяцев непрерывного культивирования клеток. После размораживания клеток способность продуцировать монАТ сохраняется,, Прививка мылам птамма на разных пассажах культивирования стабильно вызывает (образование асцитных опухолей у мышей с высоким титром монАТ в асцитной жидкости.
Для кариологического анализа клеток штамма D 264 используют 100 мета- фазных пластинок хромосом. Модальный класс не выражен, разброс хромосом от 47 до 113; 22% от обцего числа проанализированных шгеток (п 100) имеют количество хромосом от 96 до 100., В 50% клеток встречаются центромер-поло- яительные минихромосомы в количестве 1-3 на геном.,
Характеристика ионАТ, продуцируемых птаммом D 264 о
Специфичность полученных MICA определяют с помощью стандартного серологического теста гемолиза„ Анализ проводят на панели эритроцитов, состоящей из 120 образцов крови КРС, у которых заранее определяют антигенную структуру по группам крови с помощью моноспецифических аллоантисывороток„ Полученные монАТ проявляют специфичность, аналогичную моноспецифической сыворотке антн-11
МонАТ принадлежит к классу IgG по данным молекулярных весов цепей, определяемых методом электрофореза
Продуктивность клеток штаммаD264„
При культивировании клеток штамма D 264 в MI плах линии Balb/c от одной мыли получают от 1 до 8 мл асцитной жидкости (в среднем 4 мл)„ Титр антител в асцитной жидкости, установленный с помоцью гемолиза эритроцитов КРС микрометодом, составляет 10 „
Использованием штамма поясняется примером идентификации с помощью монАТ D 264 антигена Н1 на эритроцитах коров методом реакции гемолиза
Пример Исследуют эритроциты от 120 животныхс В качестве сравнения для типирования эритроцитов применяют специфическую аллоантисыворотку против антигена Н. Готовят индивидуальные суспензии эритроцитов КРС, кровь из яремной вены крупного рогатого скота отбирают в пробирки со стандартным антикоагулируюпим раствором, эритроциты 4 раза отмывают 0,08%-ным раствором хлористого натрия путем последовательного центрифугирования и разбавления (10 мин, 2000 об/мин), приготовляют 2,5%-ную суспензию эритроцитов в 0,08%-ном растворе хлористого натрияо Затем в 96-ти ячеечных планшетах для иммунологических реакций (пр-ва СССР) смешивают 20 мкл асцитной жидкости в 20 мкл суспензии эритроцитов. Полученэ164
ную смесь шЈкубнруют при в течение 30 мин и добавляют 50 мкл кроличьего комплемента, затем
снова инкубируют в течение одного часа при 37 С и оценивают гемолиз по четырех балльной системе Анализ показал, что монАТ D264 вызывают гемолиз только тех эритроцитов, которые наряду с, другими, несут антигенный фактор Н и не реагируют с эритроцитами, не содержащими антигенный фактор Н .
Для установления титра монАТ ас- цитную жидкость разводят 0,08%-ным раствором хлористого натрия и опре- деляют максимальное разведение, при котором она еце способна вызывать гемолиз эритроцитов КРС0 С этой целью использовали указанный метод постановки реакции гемолиза Уста- новлено, что полученные монАТ вызы
вают гемолиз эритроцитов, несущих антигенный фактор Н , вплоть до
разведения 1:10 „
Таким образом, в результате использования предлагаемого изобретения получен реагент, позволяющий ти пировать коров с Н -антигенным фактором в S-системе групп крови. Реагент по активности (титру антител 10) в 30 тыс„ раз превышает стандартный препарат (титр 1:32).
Формула изобретени
Ытаим культивируеьых гибридных клеток животных MUS MUSCULUS L. BCKK(II) К 264 D - продуцент моно- клональных антител против фактора II эритроцитов крупного рогатого скота„
название | год | авторы | номер документа |
---|---|---|---|
Штамм гибридных культивируемых клеток животных мUS мUSсULUS - продуцент моноклональных антител против эритроцитарного антигена V F-системы крупного рогатого скота и родственных ему видов | 1989 |
|
SU1744107A1 |
Штамм культивируемых клеток животных MUS мUSсULUS L., используемый для получения гибридомы | 1988 |
|
SU1641884A1 |
Штамм гибридных культивируемых клеток животных MUS мUSсULUS, используемый для получения моноклональных антител к группоспецифическому антигену N системы MNSS эритроцитов человека | 1988 |
|
SU1551739A1 |
Штамм культивируемых гибридных клеток животных МUSмUSсULUS L - продуцент моноклональных антител против В-лимфоцитов крупного рогатого скота | 1988 |
|
SU1645295A1 |
Штамм гибридных культивируемых клеток животных MUS мUSсULUS L. - продуцент моноклональных антител против белка р24 вируса лейкоза крупного рогатого скота | 1988 |
|
SU1627557A1 |
Штамм гибридных культивируемых клеток животных MUS мUSсULUS L.-продуцент моноклонального антитела к гликопротеиду миелина головного мозга, угнетающего активность естественных киллеров человека | 1990 |
|
SU1721092A1 |
Штамм гибридных культивируемых клеток животных МUSмUSсULUS L. - продуцент моноклональных антител к Р @ - копропорфирину 1. | 1989 |
|
SU1659477A1 |
Штамм гибридных культивируемых клеток животных MUS мUSсULUS, используемый для получения моноклональных антител к мембраносвязанной и растворимой формам Н антигена человека | 1988 |
|
SU1551737A1 |
Штамм гибридных культивируемых клеток животных MUS мUSсULUS, используемый для получения моноклональных антител к J @ М рогатого скота | 1987 |
|
SU1560549A1 |
Штамм гибридных культивируемых клеток животных MUS мUSсULUS L. - продуцент моноклонального антитела к антигену мембран жировых глобул женского молока | 1989 |
|
SU1698287A1 |
Изобретение относится к гибри- домной технологии и может быть использовано для идентификации антигена группы крови Н на эритроцитах быка Цель изобретения - получение штамма культивируемых клеток, продуцирующих моноклональные антитела (монАТ) против антигена II1 эритроцитов быка. Штамм получают гибридизацией клеток пиеломы Sp2/0 (сублииин SpEBR-5) с клетками селезенки мыиеи Balb/c, им- муни-jHpoванных эритроцитам быка Штамм культивируют в среде ДНЕМ с 10% сыворот си эмбриона коровы и стандарт- ными добавка П1 Клетки пересевают 1:3 каждые 48 ч с начальной концентрацией 1,. Утамм прививается с.ннген- ным мьпдап в виде асцитной опухо Ш, Ытамм продуцирует монАТ класса IgGk Взаимодействие монАТ с 3pnTpou«Tahm оценивают в реакции комплементзависи- мого гемолиза. Титр монАТ в асцитной жидкости в данной реакции 10 „ Итамм депонирован под номером ВСКК(П) № 264D,s Ј (/
Авторское свидетельство СССР К 1531487, кл„ С 12 N 5/00, 1988, |
Авторы
Даты
1991-04-30—Публикация
1988-12-19—Подача