Изобретение относится к биот хноло- гии и генной инженерии, в частности к обна- ружению микроорганизма, способного синтезировать сайт-специфическую рестриктазу, узнающую и расщепляющую последовательность нуклеотидов СС (A/T)(A/T)GG и названную Bss Tl.
Целью изобретения является выявление штамма продуцента Bacillus stearothermophllus, обеспечивающего получение рестриктазы Bss Tl с более высоким выходом.
Штамм бактерий В. stearothermophllus получен в результате поиска и отбора при
экстремальных условиях культивирования (68-70°С) продуцентов рестриктаэ среди почвенных микроорганизмов.
Штамм депонирован в ВКПМ ВНИИ генетики под редакционным номером В-4893 (коллекционный номер депозитора 360), а продуцируемая им эндонуклеаза рестрикции названа Bss Tl.
Морфолого-культуральные признаки. Клетки, выращенные в жидкой питательной среде, представляют тонкие, с закругленными концами грамположительные подвижные палочки, одиночные или в коротких цепочках. Размер клеток 3-4-0,5-1,0 мкм.
О 00
о о о о
Через 18-24 ч на плотной крахмало-аммиач- ной среде клетки образуют терминально расположенные овальные споры, расширяющие ее тело. На рыбном питательном агаре - плоские округлые с неровным краем беспигментные колонии, 2,0-2,5 мм в диаметре, легко снимаются бактериологической петлей. Водорастворимый, пигмент в среде не обнаружен.
Строгий аэроб. Клетки в жидкой среде растут диффузно, без образования пленки и осадка. Температурные границы роста 40- 70°С. Растет в присутствии 5% хлористого натрия, при 10% - не растет. Рост отсутствует также в средах с 0,001% лизоцима и 0,02% азида натрия. Тесты на каталазу и оксидазу положительные, на индол, сероводород и ацетоин отрицательные. Восстанавливает нитраты, синтезирует щелочную фосфатазу. Усваивает глюкозу и галактозу с образованием кислоты. Не ферментирует арабинозу, лактозу, сахарозу, ксилозу, ман- нит и глицерин.
Штамм чувствителен к пенициллину, ампициллину, мономицину, тетрациклину, стрептомицину, левомицетину, оксацилли- ну, карбеницилину, гентамицину, устойчив к налидиксовой кислоте. Штамм не патогенен.
Культивирование проводят в питательной среде, содержащей 1 % бактотриптока, 0,5% дрожжевого экстракта, 1 % натрия хлористого, рН 7,0 в колбах на качалке со скоростью перемешивания 200-250 об/мин при 68-70°С. Выход биомассы 3,0-3,5 г влажных клеток на 1 л среды. Выход фермента Bss TI не менее 10000 ед. акт,/г влажной биомассы.
Полученная рестриктаза BssTI характеризуется следующими свойствами: узнает и специфически расщепляет последовательность нуклеотидов CC(A/TXA/T)GG, оптимальное значение рН для действия рестриктазы 7,5-8.0, оптимальная температура действия 50-55°С, оптимальная концентрация NaCI 50 мМ.
Определяющие отличия предлагаемого штамма В. stearothermophlliis (360) В-4893: высокое содержание рестриктазы Bss TI, составляющей 10000 ед.акт./г влажной биомассы (в 5 раз выше), отсутствие патоген- ности штамма, использование для культивирования микроорганизмов простой дешевой среды.
П р и м е р 1. Получение биомассы.
Клетки В. stearotnermophllus (360), хранящиеся подслоем вазелинового масла при 4°С, высевают на скошенный питательный агар и инкубируют при 68-70°С в течение 18ч. Затем клетки вносят в колбу с 50 мл
жидкой питательной среды и выращивают инокулят на качалке со скоростью вращения 200-250 об/мин при 68-70°С 18-20 ч. Полученную культуру из расчета 5-10% исполь.зуют для засева 250 мл среды, содержащей 1% бактотриптона, 0,5% дрожжевого экстракта, 1% натрия хлористого. Дальнейшее культивирование проводят 16-18 ч на качалке в этих же условиях. Биомассу собирают
центрифугированием в течение 30 мин при 5000 об/мин на центрифуге Mistral.
Выход сырой биомассы 3,5 г/л культу- ральной жидкости.
П р и м е р 2. Выделение и очистка
рестриктазы Bss TI.
10 г клеток суспендируют в 30 мг 0,02 М трис-HCI буфера, рН 7,5, содержащего 1х10 3М/ -меркаптоэтанола и 0,1 % тритона Х-100, разрушают на ультразвуковом дезинтеграторе. Обломки клеток удаляют центрифугированием и надосадочную жидкость наносят на колонку с биогелем А-0,5 М объемом 500 мл, уравновешенную 0,02 М калий- фосфатным буфером, содержащим 1x10 М
/ -меркаптоэтанола, 5x10 М ЭДТА, 0,8 М NaCI, 0,1% тритона Х-100 (буфер А). Фермент элюируют тем же буфером со скоростью 20 мл/ч. Фракции объемом 10 мл собирают и анализируют на присутствие
фермента. Фракции, содержащие ректрик- тазную активность, объединяют и диализу- ют против 2 л 0,02 М ка-лий-фосфатного буфера, рН 7,5, содержащего М /3- меркаптоэтанолаибхЮ М ЭДТА (буфер В),
меняя буфер дважды. Диализат наносят на колонку объемом 50 мл с ДЕАЕ-целлюлозой, уравновешенную буфером В. Колонку промывают буфером В и адсорбированный фермент элюируют 500 мл градиента NaCI
(0,1-ОМ) в буфере В. Колонку промывают буфером В и адсорбированный фермент элюируют 500 мл градиента NaCI (0,1-ОМ) в буфере В. Фракции, элюированные при 0,40-0,55 М NaCI, содержащие рестриктазу,
объединяют и диализуют против 2 л буфера В, меняя его дважды. Фермент после диализа наносят на колонку с фосфоцеллюлозой Р-11 объемом 20 мл, уравновешенную буфером В. Элюацию фермента проводят 300 мл
градиента NaCI (0-1,ОМ) в буфере В. Фракции, содержащие максимальную активность рестриктазы, элюируемые при 0,66-0,7 М NaCI, объединяют и диализуют против буфера В, содержащего 0,1 М NaCI и 50% глицерина,
За единицу активности принимают минимальное количество фермента, необходимого для полного расщепления 1 мкг ДНК фага А в течение 1 ч при 50°С. Ферментный
препарат хранится при -20°С. Выход фермента 10000 ед./r биомассы, активность 10000 ед./мл.
Для определения последовательности нуклеотидов, узнаваемой рестриктазой Bss TI, проводят гидролиз ДНК фага ре- стриктазами Bss TI и Sty I по отдельности, а также совместный гидролиз этими рестрик- тазами. Наблюдаемая картина полного совпадения фрагментов, полученных при гидролизе ДНК рестриктазами Bss TI и Sty I порознь и совместно, указывает на то, что рестриктаэа Bss TI является изомером Sty I, узнает и расщепляет последовательность CC(A/TXA/T)GG,.
0
Полученный штамм обладает следующими преимуществами по сравнению с известным: растет на более доступной, дешевой среде без антибиотиков, обеспечивает повышенный выход рестриктазы BssTI.
Поскольку рестриктаза Bss TI имеет сайт узнавания CC(A/TXA/T)GG, идентичный сайту узнавания Sty I, она может заменить Sty I в экспериментах по фрагментации ДНК А по этим сайтам.
Формула изобретения Штамм бактерий Bacillus stearo- 15 thermophllus ВКПМ В-4893 - продуцент рестриктазы BSSTI.
название | год | авторы | номер документа |
---|---|---|---|
Штамм бактерий FLаVовастеRIUм ваLUSтINUм - продуцент рестриктазы FвL 1 | 1989 |
|
SU1689400A1 |
Штамм бактерий КLевSIеLLа рNеUмоNIае-продуцент рестриктазы Кр @ 378 1 | 1989 |
|
SU1659480A1 |
Штамм бактерий ЕSснеRIснIа coLI-продуцент рестриктазы @ со130 1 | 1989 |
|
SU1618760A1 |
Штамм бактерий АсINетовастеR саLсоасетIсUS продуцент рестриктазы Аса 1 | 1989 |
|
SU1661212A1 |
Штамм бактерий BacILLUS тнURINGIеNSIS - продуцент рестриктазы изошизомера | 1988 |
|
SU1544802A1 |
Способ получения биомассы SтRертомYсеS, обогащенной эндонуклеазой рестрикции SFI I. | 1989 |
|
SU1701745A1 |
Способ получения эндонуклеазы рестрикции | 1982 |
|
SU1095645A1 |
Способ получения рестриктазы Т @ 201 @ | 1989 |
|
SU1703687A1 |
Штамм SтRертомYсеS FRaDIae - продуцент рестриктазы SFR I | 1988 |
|
SU1645300A1 |
Способ получения рестриктазы, способной узнавать и расщеплять последовательность нуклеотидов GTCGAC | 1989 |
|
SU1752769A1 |
Roberts R.T | |||
Restrictions enzymes and their isoschlzomers | |||
- Nucl | |||
Acids Res., 1988, v | |||
Устройство для электрической сигнализации | 1918 |
|
SU16A1 |
Искроудержатель для паровозов | 1920 |
|
SU271A1 |
Mfse K | |||
and NakaJIma K | |||
Purification of a new restriction endonuclease, Sty I, from Escherlchla coll carrejlng hsd mlnlplasmid, - Jene, 1985, v | |||
Способ сопряжения брусьев в срубах | 1921 |
|
SU33A1 |
Клапан | 1919 |
|
SU357A1 |
Авторы
Даты
1991-10-23—Публикация
1989-12-11—Подача