Изобретение относится к новому химическому соединению, конкретно к олмгоде- зоксирибонуклеотиду формулы
5 -d (G G Т G С G G G С С Т С Т Т С G С ,
О)
которое может быть использовано для определения первичной структуры ДНК по методу Сенгера.
Целью изобретения является получение нового олигодезоксирибонуклеотида, позволяющего увеличить разрешающую способность структурных гелей и упростить способ определения первичной структуры ДНК по методу Сенгера,
Новый олигодезоксирибонуклеотид комплементарен (+}-цепи фагов М13 тр. Сайт отжига праймера расположен на расстоянии 120 нуклеотидов от области полилинкера (праймер - 120).
На чертеже приведена структурная формула.
П р и м е р 1. Синтез олигодезоксирибонуклеотида формулы (1),
Синтез олигодезоксирибонуклеотида проводят на трехколоночном полуавтоматическом синтезаторе, сконструированном на основе управляющего блока ВЭЖХ Attex и шес(иходовых кранов фосфитным методом, В синтез берут 15-20 мг носителя с посадкой первого звена. В качестве мономерных компонентов используют 53-0 и N-замещенные З -(М,М-диизопропила- мид)метилфосфиты нуклеозмдов. В качестве 5 -0-защитной группы применяют диметокситритильную группу. Для блокирования экзоциклических аминогрупп гетероциклических оснований цитидина и аденозина используют бензольную группу, для гуанозина - изобутирильную группу. В качестве твердофазного носителя применяют Силохром С80, содержащий аминопро- пильную группу (размер частиц 100-200 мкм, диаметр пор 400-600 А). Последовательность операций при присоединении каждого мономерного звена следующая: промывка - ацетонитрил (2 мл, 0,5 мин); детритилирование - 0,2 М трифтороуксус- ная кислота в дихлорэтане (2 мл, 0,7 мин); промывка - ацетонитрил (3 мл, 0,8 мин); конденсация - 0,1 М раствор мономера/0,5 М раствор тетразола в ацетонитриле (1/1, v/v, 0,15 мл, 3 мин), добавление нуклеотид- ного компонента и тетразола проводят вручную с помощью шприца; купирование - N-метилимидазол/пиридин/уксусный ангидрид/дихлорэтан (1/1/171, v/v, 0,5 мл, 0,5 мин); окисление - 1 %-ный раствор йода в смеси уксусной кислоты с пиридином (1 /9, v/v, 0,7 мл, 0,5 мин). После окончания синтеза проводят удаление защитных групп. Сначала удаляется диметокситритильная группа обработкой 0,2 М раствором трифто- роуксусной кислоты в дихлорэтане непосредственно в реакционной колонке. Затем полимер обрабатывают смесью тиофенол/триэтиламин/диоксан (1/1/3, v/v) для удаления 0-метильных защитных групп. Снятие олигодезоксирибонуклеотида с полимера и удаление N-ацильных защитных
групп проводят обработкой раствором аммиака С 8-30%) при 60°С в течение 12 ч. Носитель удаляют фильтрованием после охлаждения до 0°С. Фильтрат упаривают в вакуумном испарителе, растворяют в 200
мл воды. Очистку полностью деблокированного олигодезоксирибонуклеотида проводят в 20%-ном денатурирующем по- лиакриламидном геле с 7 М мочевиной в стеклянных пластинах (20-20 см). Электрофорез ведут при напряжении 600 В, В качестве электродного буфера используют 0,05 М трис-борат (рН 8,2), 1 мМ ЭДТА, После окончания электрофореза гель помещают на флуоресцентную пластину Siiufol UV-254,
зону.- содержащую олигонуклеотид, идентифицируют под источником УФ-излучения. Элюцию олигодезоксирибонуклеотида из вырезанной зоны полизкриламидного геля проводят в 200 мкл 12%-ного раствора перхлората натрия при 37°С в течение 12 ч, Олигодезоксирибонуклеотид осаждают 9 объемами ацетона и растворяют в воде до концентрации 0,5 о.ед/мл. Структуру синтезированного олигонуклеотида подтверждают секвенированием по методу МаксамаТмлберта.
П р и м е р 2. Использование олигсде- зоксирибонуклеотида формулы (1) в качестве праймера.
Радиоактивное мечение олигодезокси- рибонуклеотидов формулы (1) и известного формулы
0
5
0
5
5 -d(G TAAAACGACGGCCAG Т)-3 (2)
проводят в растворе общим объемом 5 мкл, содержащем 2-3 пМ праймера, 3 пМ CE-PJ-ATP (уд. активность 3000 Ки/мМ), 50 мМ трис-НС (рН 8,3), 35 мМ MgCIa и 0,1-1 ед, активности полинуклео- тидкиназы (37°С, 30 мин.). После добавления 7 мкл (2 мкг) фага М13 тр 10 с клонированным фрагментом - интерферона быка и 1 мкл буфера; 50 мМ трис-НС (рН 8,3), 35 мМ MgCte. проводят отжиг при 55°С 15 мин. Фаг с отожженным праймером разносят в микротитровальную плашку (по 3 мкл) в лунки с обозначениями G, А, Т, С, Затем в каждую лунку добавляют по 2 мкл соответствующих смесей dNTP/ddNTP (табл. 1) и 1 мкл (1 ед.акт.) фрагмента Кленова ДНК-полимеразы 1 Е и инкубируют при 37°С 15 мин. После добавления 1 мкл раствора colli (2,5 мМ каждого) инкубируют при 37°С 15 мин. Затем добавляют по 3 мкл буфера
для нанесения (деионизованный формамид, бромфеноловый голубой, ксиленцианол), прогревают при 80°С 30 мин и 2-3 мкл каждой реакционной смеси разделяют в денатурирующем полиакриламидном геле. Продукты реакции по Сенгеру с использованием олигодезоксирибонуклеотида формулы (1) разделяют в обычном полиакриламидном геле, с использованием олигодезоксирибонуклеотида формулы (2) - в обычном и градиентном полиакриламидном гелях. Применяют гели толщиной 0,4 мм. Состав обычного денатурирующего по- лиакриламидного геля: акриламид5% (19:1, акриламидгбис-акриламид), мочевина 50%, Трис 130 мМ, борная кислота 40 мМ, ЭДТА 2,8 мМ, рН8,8.
Состав градиентного денатурирующего геля: акриламид 5% (19:1, акриламид:бис- акриламид), мочевина 50%, градиент буфера (1:2,5): от верхней части геля - 65 мМ Трис, 20 мМ борной кислоты, 1,4 мМ ЭДТА (рН 8,8) к нижней части геля - 325 мМ Трис, 100 мМ борной кислоты, 7 мМ ЭДТА, 10% сахарозы (рН 8,8).
Сравнительные характеристики результатов электрофореза приведены в табл. 2,
Электрофорез проводят при постоянном токе 30 мА с использованием металлической пластины для термостатирования. Как видно из табл. 2, разрешающая способность обычного геля с применением праймера (1) значительно превышает разрешающую способность геля с применением праймера (2) и сравнима с разрешающей способностью градиентного геля с использованием праймера (2).
Таким образом, использование изобретения позволяет увеличить разрешающую способность структурных гелей, что позволяет чтение с одного простого геля на клон
на 100-130 нуклеотидов больше и упростить способ определения первичной структуры ДНК по методу Сенгера за счет исключения применения специальных методов.
Формула изобретения
Олигодезоксирибонуклеотид формулы
55-d(GGTGCGGGCCTCTTCGC П-З
в качестве универсального праймера для определения первичной структуры ДНК по методу Сенгерз.
название | год | авторы | номер документа |
---|---|---|---|
СПОСОБ АМПЛИФИКАЦИИ НУКЛЕИНОВЫХ КИСЛОТ С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ ФОСФОРИЛГУАНИДИНОВЫХ ОЛИГОНУКЛЕОТИДОВ | 2017 |
|
RU2698134C2 |
Рекомбинантная плазмидная ДНК @ HRAST @ =3, кодирующая онкоген HRAS=1 карциномы щитовидной железы человека, и способ ее конструирования | 1990 |
|
SU1815273A1 |
Способ получения гибридного активатора плазминогена, содержащего область, ответственную за средство с фибрином активатора плазминогена ткани, и область, ответственную за ферментную активность проурокиназного полипептида | 1987 |
|
SU1732814A3 |
СПОСОБ ОБНАРУЖЕНИЯ ОШИБОЧНО СПАРЕННЫХ ОСНОВАНИЙ В НУКЛЕИНОВЫХ КИСЛОТАХ | 2001 |
|
RU2249618C2 |
РЕКОМБИНАНТНАЯ ПЛАЗМИДА, КОДИРУЮЩАЯ ПОВЕРХНОСТНЫЙ АНТИГЕН (HBSAG) ВИРУСА ГЕПАТИТА B, ЕЕ ПОЛУЧЕНИЕ И ШТАММ ДРОЖЖЕЙ HANSENULA POLYMORPHA - ПРОДУЦЕНТ ПОВЕРХНОСТНОГО АНТИГЕНА (HBSAG) ВИРУСА ГЕПАТИТА B | 2002 |
|
RU2207374C1 |
ШТАММ БАКТЕРИЙ ESCHERICHIA COLI - ПРОДУЦЕНТ ЭНДОНУКЛЕАЗЫ РЕСТРИКЦИИ ECO27K1 | 1993 |
|
RU2044053C1 |
Фрагмент ДНК, кодирующий часть поверхностного белка СД4Т - лимфоцитов человека, ответственную за связывание с протеином др120 вируса иммунодефицита человека | 1990 |
|
SU1761808A1 |
ШТАММ БАКТЕРИЙ ESCHERICHIA COLI - ПРОДУЦЕНТ ЭНДОНУКЛЕАЗЫ РЕСТРИКЦИИ ECO 75 KI | 1993 |
|
RU2053298C1 |
ПОСЛЕДОВАТЕЛЬНОСТЬ ДНК-АПТАМЕРОВ, СВЯЗЫВАЮЩАЯСЯ С ПРОТЕОЛИТИЧЕСКОЙ СУБЪЕДИНИЦЕЙ НЕЙРОТОКСИНА ТИПА A CLOSTRIDIUM BOTULINUM | 2014 |
|
RU2571210C1 |
РЕКОМБИНАНТНАЯ ПЛАЗМИДНАЯ ДНК РС VА ДЛЯ ЭКСПРЕССИИ РИБОЗИМА В ЭУКАРИОТИЧЕСКОЙ КЛЕТКЕ | 1995 |
|
RU2097429C1 |
Изобретение касается нуклеотидов, в частности олигодёзоксирибонуклеотида формулы tf-dfG G Т G С G G G С С Т СТ Т С G С Т)-3 в качестве универсального прайме- ра для определения первичной структуры ДНК по методу Сенгера. Цель изобретения - создание нового праймера, позволяющего увеличить разрешающую способность структурных гелей и упростить определение первичной структуры ДНК по методу Сенгера. Синтез нового нуклеотида ведут на трехколоночном полуавтоматическом синтезаторе, сконструированном на основе управляемого блока ВЭЖХ Altex и 6-ходо- вых кранов фосфитным методом. В качестве носителя берут Счлохром С80, содержащий аминопропильную группу (размер частиц 100-200 мкм, диаметр пор 400-600 А), а качестве мономерных компонентов используют и N-замещенные 3 -{М,Г -дии- зопропиламид)метилфосфиты нуклеозидов. Для защиты берут диметокситритиль- ную группу, для блокирования экзоцикличе- ских аминогрупп цитидина и аденозина - бензоильную группу. На носитель сажают первое звено, а последовательность операций при присоединении каждого мономерного звена ведут известным путем с последующим снятием защитных групп известными приемами и определением структуры секвенированием по методу МзксамэТилберга. Новый нуклеотид комплементарен (+}-цепи фагов М13 тр, Сайт отжига праймера расположен на расстоянии 120 нуклеотидов от области полилинкера. Разрешающая способность обычного геля с применением данного праймера выше, чем с применением известного, и сравнима с разрешающей способностью градиентного геля с использованием известного праймера. Это позволяет вести чтение с одного простого геля на клон на 100-130 нуклеотидов больше и упрощает определение первичной структуры ДН К по методу Сенгера за счет исключения применения специальных методов. 1 ил., 2 табл. JWOTB Vs-,.. .raS XI
Таблица 1
Таблица 2
MISmpie
Hindi
Sna IAce I
SstIXmalXbal SailSphI
gATGATTACQMTTCGAGCTCGGTACCCGQGGATCCTCTAGAGTCGACCTGCAGGCATGCAAGCTT EcoRIKpnlBamH PstIHindi 11
TGACCQQCAQCAAAATG - 5 (-20)
GGCAL TGGCCGTCGTTTTACAACGTCGTGACTGGQAAAACCCCTGGCGTTACCCA-ACTTAATCGCC
TCGCTTCTCCGGGQGTGG - 5 (-120) TTGCAGCACATCCCCCTTTC6CCAGCTGGCGTAATAGCGMGAGGCCCGCACCGATCGCCCTTCCC
Dukworth M.L., Gait M.I., Goelet P | |||
et al | |||
Rapid synthesis of ollgonucleotldes VI | |||
Efficient Synthesis of peptadeca- deoxyribonucleotides by an Improved solid phase phosphotriester route | |||
- Nucl, Acid Res., 1981, v | |||
Разборный с внутренней печью кипятильник | 1922 |
|
SU9A1 |
Способ разработки торфяных залежей | 1925 |
|
SU1691A1 |
Sanger F., Nicklen S., Coulson A.R | |||
DNA Sequencing with chain terminating Inhibitors | |||
- Proc | |||
Natl | |||
Acad | |||
Sci, USA, 1977, v | |||
Приспособление в центрифугах для регулирования количества жидкости или газа, оставляемых в обрабатываемом в формах материале, в особенности при пробеливании рафинада | 0 |
|
SU74A1 |
Авторы
Даты
1991-12-23—Публикация
1989-05-12—Подача