Изобретение относится к микробиологической промышленности и может быть использовано для получения протеолитических ферментов.
Известен продуцент протеолитических ферментов Actinomyces spheroides M8-2, который при культивировании на среде, содержащей глюкозу, цитрат натрия, сернокислый аммоний, сернокислое железо, имеет протеолитическую активность культу- ральной жидкости 2,48-2,76 ПЕ/мл, а лиофи- лизированного препарата - 2,76-3,3 ПЕ/мг (в 1 мкМ тирозина).
Недостатками данного продуцента являются невысокая протеолитическая активность культуральной жидкости и осажденного из нее препарата, а также низкая тромболитическая активность препарата (10 мг препарата растворяют тромб за 1ч).
Наиболее близким по технической сущности к изобретению является штамм Streptomyces caligosus DS 14486. При культивировании на питательной среде, содержащей пептон, дрожжевой экстракт, агар-агар, глюкозу, при рН 6,5 в течение 96 ч получают культуральную жидкость с активностью 20 ПЕ/мл и осажденный из нее ферментный препарат с активностью 8-10 ПЕ/мг (в мкМ тирозина).
Недостатками штамма являются невысокая протеолитическая активность, обогащенная питательная среда и длительное время культивирования.
Цель изобретения - получение штамма актиномицета Streptomyces lavendulae ИНVJ
СО СЛ 00 О- 4
MH-SV-36 - высокоактивного продуцента протеолитических ферментов.
Штамм депонирован во Всесоюзной коллекции промышленных микроорганизмов под номером ВКПМ-3-910. Штамм выделен в ИНМИ АН СССР из почвенного образца. Штамм хранят в лиофилизирован- ном состоянии на картофельном агаре или среде СР-1 с глюкозой.
Штамм характеризуется следующими морфологическими и физиолого-биохимиче- скими признаками,
Общая характеристика: аэробный, грамположительный, мицелиальный.
Мицелий воздушный.
Картофельный агар. Белые или серовато-розовые колонии (цвет лаванды), субстратный мицелий бежевого цвета, воздушный мицелий хорошо развит.
Овсяный агар. Колонии серовато-сиреневого цвета или белые, субстратный мицелий темно-бежевого цвета, воздушный мицелий хорошо развит.
Сусло-агар. Рост умеренный, колонии светло-коричневые с развитым воздушным мицелием.
МПА. Колонии бежевого цвета, воздушный мицелий слабо развит либо отсутствует.
Соевый агар. Рост хороший, колонии серо-розоватого цвета, субстратный мицелий коричневого цвета, воздушный мицелий хорошо развит.
Образование пигментов. Не наблюдается образование растворимых меланоид- ных пигментов на всех агаризованных и жидких средах, применяемых для культивирования.
Морфология спороносцев. Спороносцы в виде примитивных спиралей (1-2 витка), зрелые цепи содержат 10-15 спор, поверхность спор гладкая.
Физиолого-биохимические признаки. Желатину разжижает, молоко коагулирует и пептонизирует. Сероводород и индол не образует. Нитраты не восстанавливает. В качестве источника углерода усваивает глюкозу, фруктозу, рафинозу, маннит, инозит. Слабо усваивает ксилозу, сахарозу и арабинозу. Источники азота: соли аммония и аминокислоты. На ломтиках картофеля и моркови наблюдается хороший рост. Оптимальная температура роста 26-28°С. При 37°С рост слабый, при 45° С рост отсутствует.
Штамм выращивают на дешевой питательной среде, содержащей, г/л: кукурузная мука 10-20; пептон 0,5-1,8; сухие кормовые дрожжи 0,5-1,0; MgSO/i -7Н20 0,02-0,04; водопроводная вода- рН среды
6,4-6,8. Среду разливают по 50 мл в колбы Эрленмейера объемом 250 мл. Количество посевного материала 10%. Выращивание проводят на качалке (200 об/мин) в течение
48-72 ч. Мицелий отделяют центрифугированием при 5000 об/мин. Протеолитиче- скую активность определяют по методу Кунитца и выражают в условных-единицах ПЕ/мл, мг(вмкМ тирозина). Фибринолити0 ческую активность измеряют по диаметру зон лизиса по методу Аструпа, а тромболи- тическую активность - по времени лизиро- вания in vitro экспериментально полученных тромбов из донорской крови.
5 Осаждение ферментов из культуральной жидкости осуществляют с помощью сульфата аммония. Полученный препарат лиофили- зируют и хранят в запаянной ампуле при -5°С.
0 Протеолитическая активность культуральной жидкости 40-97 ПЕ/мл, а лиофили- зированного препарата 40-80 ПЕ/мг. Фибринолитическая активность по плазми- ну 3000 ед./мл для культуральной жидкости
5 и5200ед/мг для препарата. В плазме крови активность полностью сохраняется. Полный лизис тромба in vitro культуральной жидкостью проходит за 30-40 мин, а 1 мг препарата - за 5-10 мин.
0 Пример 1. Штамм Streptomyces lavendulaeBKnM-S-910 выращивают на еле- { дующей питательной среде, г/л: кукурузная мука 10; пептон 0,5; сухие кормовые дрожжи 0,05; MgS04 7Н20 0,02; вода водопровод5 ная, рН 6,8. Среду разливают по 50 мл в колбы Эрленмейера объемом 250 мл. Количество внесенного посевного материала 10%. Выращивание проводят на качалке (200 об/мин) в течение 48 ч. Мицелий отде0 ляют центрифугированием при 5000 об/мин. Осаждение ферментов из культуральной жидкости осуществляют с помощью сульфата аммония 80% насыщения. Осадок отделяют центрифугированием при 5000 об/мин,
5 диализуют против дистиллированной воды и лиофилизируют. Протеолитическую активность определяют по Кунитцу и выражают в ПЕ/мл, мг (в мкМ тирозина).
Протеолитическая активность культу0 ральной жидкости 40 ПЕ/мл, осажденного препарата 68 ПЕ/мг. Фибринолитическая активность культуральной жидкости по Аст- рупу 2900 ед./мл, препарата 4800 ед./мг. Лизис тромба донорской крови in vitro куль5 туральной жидкостью проходит за 30 мин, а препаратом (1 мг, 740 мкг белка)- за 10 мин. Пример 2. Штамм Streptomyces lavendulae ВКПМ-3-910 выращивают на питательной среде, г/л: кукурузная мука 15,0; пептон 0,7; сухие-кормовые дрожжи 0,08;
MgS04 0,03; вода водопроводная, рН 7,0. Культивирование в течение 48 ч. Обработку культуральной жидкости и определение активностей проводят по примеру 1.
Протеолитическая активность культуральной жидкости 97 ПЕ/мл, а лиофилизи- рованного препарата 80 ПЕ/мл. Фибринолитическая активность культуральной жидкости достигает 3000 ед./мл, а препарата 5000 ед./мг. Лизис тромба культуральной жидкостью проходит за 25 мин, препаратом - за 5 мин.
Пример 3. Штамм Streptomyces lavendulae ВКПМ-5-910 выращивают на питательной среде, г/л: кукурузная мука 20; пептон 1,0; сухие кормовые дрожжи 1,0; MgS04 7Н20 0,05; вода водопроводная, рН 6,8. Среду разливают в колбы на 250 мл по 50 мл. Культивирование проводят на качалке (200 об/мин) при 28°С в течение 72 ч. Отделяют культуральную жидкость и осаждают из нее ферменты сульфатом аммония 80% насыщения. Осажденный осадок диа- лизуют и лиофилизируют.
Протеолитическая активность культуральной жидкости 90 ПЕ/мл, препарата 63
ПЕ/мг. Фибринолитическая активность культуральной жидкости 2800 ед./мл, препарата 4700 ед./мг. Лизис тромба культуральной жидкостью проходит за 35-40 мин,
а препаратом (1 мг, 800 мкг белка)-за 5 мин. Предлагаемый штамм позволяет получать высокую протеолитическую активность в культуральной жидкости и препарате при использовании дешевой,
экономически доступной питательной среды. Разрушение экспериментально полученных тромбов крови in vitro культуральной жидкостью проходит за 20- 40 мин, а препаратом - за 5-10 мин.
Протеазы, полученные с помощью предлагаемого штамма Streptomyces lavendulae ВКПМ-5-910, могут быть использованы в кожевенной промышленности для обработки шкур крупного рогатого скота, а также в
медицине для лечения тромбоэмболитических заболеваний, для обработки ожоговых
и гнойных ран, медицинских инструментов.
Формула изобретения
Штамм актиномицета Streptomyces
lavendulae ВКПМ-3-910 - продуцент проте- олитических ферментов.
название | год | авторы | номер документа |
---|---|---|---|
СУБСТАНЦИЯ ДЛЯ ДЕРМАТОЛОГИЧЕСКИХ ЛЕКАРСТВЕННЫХ СРЕДСТВ НА ОСНОВЕ КОЛЛАГЕНАЗЫ МИКРОБНОГО ПРОИСХОЖДЕНИЯ "УЛЬТРАЛИЗИН" | 2007 |
|
RU2340371C1 |
Штамм актиномицетов @ @ @ 8-2-продуцент тромболитических ферментов,специфичных к фибрину | 1981 |
|
SU1010127A1 |
Препарат-реагент для очистки поверхностей от биологического обрастания | 1991 |
|
SU1794795A1 |
Способ получения протеолитических ферментов для обработки кожевенного сырья | 1990 |
|
SU1788010A1 |
Способ получения коллагеназы | 1991 |
|
SU1822879A1 |
ШТАММ STREPTOMYCES HYGROSCOPICUS 7 - ПРОДУЦЕНТ ПРОТЕОЛИТИЧЕСКОГО ФЕРМЕНТА ГИГРОЛИТИНА | 1998 |
|
RU2152432C1 |
ШТАММ SAROCLADIUM STRICTUM - ПРОДУЦЕНТ ФИБРИНОЛИТИЧЕСКИХ ФЕРМЕНТОВ С АКТИВАТОРНОЙ К ПЛАЗМИНОГЕНУ АКТИВНОСТЬЮ | 2019 |
|
RU2728456C1 |
ШТАММ ARTHROBOTRYS LONGA MECHT - ПРОДУЦЕНТ ЛОНГОЛИТИНА - КОМПЛЕКСА ФИБРИНОЛИТИЧЕСКИХ И ТРОМБОЛИТИЧЕСКИХ ФЕРМЕНТОВ СО СПЕЦИФИЧЕСКОЙ СПОСОБНОСТЬЮ К АКТИВАЦИИ ПЛАЗМИНОГЕНА И НАРУЖНОЕ СРЕДСТВО ЛЕЧЕНИЯ ТРОМБОЗОВ | 2000 |
|
RU2182596C2 |
Штамм бактерий BacILLUS ceReUS-продуцент протеолитических ферментов с тромболитическим действием | 1988 |
|
SU1615177A1 |
Штамм @ @ @ -82-продуцент холестериноксидазы | 1983 |
|
SU1125250A1 |
Изобретение относится к биотехнологии, в частности к получению высокоактив- ного штамма - продуцента протеолитических ферментов. Штамм актиномицета Streptomyces lavendulae BKAM-S- 910 на среде следующего состава, г/л: кукурузная мука 10-20; пептон 0,5-1,8; сухие кормовые дрожжи 0,5-1; сернокислый магний 0,02-0,04; вода водопроводная остальное, синтезирует активные внеклеточные протеолитические ферменты, обладающие широким спектром действия. Протеолитическая активность культуральной жидкости составляет по Кунитцу 40-97 ПЕ/мл, фибри- нолитическая активность 3000 ед./мл, а полный лизис тромба проходит на 30-60 мин. Лиофилизированный ферментный препарат, полученный из культуральной жидкости, характеризуется следующей протеолитической активностью: по казеину 40-80 ПЕ/мл, по фибрину 5200 ед./мл; при концентрации препарата 1 мг/мл тромб ли- зируется за 5-10 мин. Синтезируемые штаммом активные внеклеточные протеазы могут быть использованы в кожевенной, пищевой промышленности и в медицине. (Л С
Штамм бактерий BacILLUS ceReUS-продуцент протеолитических ферментов с тромболитическим действием | 1988 |
|
SU1615177A1 |
Способ гальванического снятия позолоты с серебряных изделий без заметного изменения их формы | 1923 |
|
SU12A1 |
Штамм актиномицетов @ @ @ 8-2-продуцент тромболитических ферментов,специфичных к фибрину | 1981 |
|
SU1010127A1 |
Способ гальванического снятия позолоты с серебряных изделий без заметного изменения их формы | 1923 |
|
SU12A1 |
Способ получения протеолитического фермента из SтRертомYсеS caLIGoSUS DS 14486 штамм NRRL 8195 | 1977 |
|
SU1001862A3 |
кл | |||
Способ гальванического снятия позолоты с серебряных изделий без заметного изменения их формы | 1923 |
|
SU12A1 |
Авторы
Даты
1992-05-23—Публикация
1989-12-22—Подача