(54) СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ Т-ЛИМФОЦИТОВ
название | год | авторы | номер документа |
---|---|---|---|
Способ выделения лимфацитов и гранулоцитов | 1982 |
|
SU1123645A1 |
СПОСОБ ОДНОВРЕМЕННОГО ОПРЕДЕЛЕНИЯ КЛЕТОК С РЕЦЕПТОРАМИ К БИОЛОГИЧЕСКИ АКТИВНЫМ ВЕЩЕСТВАМ И ИХ ПОПУЛЯЦИОННОЙ ПРИНАДЛЕЖНОСТИ | 1994 |
|
RU2081418C1 |
Способ разделения лимфоцитов периферической крови | 1979 |
|
SU895439A1 |
Способ определения е-розеткообразующих клеток | 1979 |
|
SU862919A1 |
Способ Коваленко П.П.подбора антибиотиков для лечения больных с гнойной инфекцией | 1980 |
|
SU951786A1 |
Способ диагностики аутоаллергических заболеваний | 1986 |
|
SU1467514A1 |
Способ определения чувствительности лимфоцитов к левамизолу | 1982 |
|
SU1064952A1 |
Способ дифференциальной диагностики гломерулонефрита и пиелонефрита у детей | 1987 |
|
SU1532870A1 |
СПОСОБ УДАЛЕНИЯ Т-ЛИМФОЦИТОВ ИЗ СУСПЕНЗИИ МОНОНУКЛЕАРНЫХ КЛЕТОК ЧЕЛОВЕКА | 1988 |
|
SU1577520A1 |
СПОСОБ ИССЛЕДОВАНИЯ ИММУНОКОМПЕТЕНТНЫХ КЛЕТОК ДЛЯ ОЦЕНКИ ИММУННОГО СТАТУСА НОРОК | 2003 |
|
RU2263310C2 |
Изобретение относится к области иммунологии.
Известен способ определения Т-лимфоцитов путем центрифугирования крови с последующим отделением мононуклеарных клеток, инкубирования их с эритроцитами барана в среде Хенкса, отделением полученного осадка, ресуспендирования его и подсчета Т-лимфоцитов fl.
Однако известный способ не позволяет точно определить Т-лимфоциты.
Целью изобретения является повышение точности способа.
Цель достигается тем, что инкубирование проводят в среде Хенкса, дополнительно содержащей хлорид цинка в концентрации 1 105 - 3- 105 г/мл среды при 8 - 22°С.
Пример 1. Выявление Т-лимфоцитов крови у людей. Лимфоциты выделяют из венозной крови. Гепаринизированную (10 ед/мл) кровь (5 мл) разбавляют раствором Хенкса (без Са и Mg - для предотвращения эффекта слипания клеток) в соотнощении 3:2. Затем 8,3 мл разбавленной крови осторожно наслаивают в центрифужных стаканах (емкостью 25 мл) над 7 мл раствора,
состояп его из 5,2% фиколла 400 и 60% верографина плотностью 1,077. Центрифугирование проводят в центрифуге К-23 на роторе-крестовине при 900 g в течение 70 мин при 18°С. Мононуклеарные клетки (96% лимфоцитов), находившихся на границе плазмы крови и фиколла-верографина, отсасывают пастеровской пипеткой, дважды промывают раствором Хенкса (без Са и Mg) по 20 мл и дважды центрифугируют при 200 g в течение 10 мин. Полученный осадок клеток ресуспендируют в растворе Хенкса (с Са и Mg ) с добавлением к нему ZnCIj в конечной концентрации 1 10 г/мл (0,001%). Жизнеспособность клеток составляет 98 - 100%. Определяют концентрацию клеток и доводят ее до 2- 10 на I мл.
Далее в силиконизированные центрифужные пробирки, содержащие по 1 мл суспензии лимфоцитов (2- 10 клеток/мл), добавляют по 0,1 мл дважды отмытых раствором Хенкса эритроцитов барана (хранившихся не более 10 дней в растворе Альверсера при 4°С) в концентрации 10 на 1 мл. В некоторые добавляют еще абсорбированную сыворотку эмбрионального теленка. Инкубационную суспензию клеток перемешивают, центрифугируют при lOOg в течение. 10 мин и оставляют на 8 -20ч при 8 - 22°С. После инкубирования надосадочную жидкость отсасывают, осадок клеток рёсуспёндируют путём остброжногб вращения ( об/с) рукой пробирок с наклоном 30 - 45°. Суспензию клеток вводят в камеру Горяева или н аносят на объективные стекла пастеровской пипеткой. Мазки делают общеизвестным способом, фиксируют абсолютным метанолом и окрашивают по Романовскому-Гимзе.
Процент розеткообразуюших лимфоцитов определяют просматривая по 200 лимфоцитов. Розеткой считают лимфоцит с прикрепившимися X нему не менее трех эритроцитов барана.
В табл. 1 приведены средние арифметические измерения, стандартные отклонения или нижний и верхний пределы измерений.
Таким образом, при инкубировании клеток в Среде Хенкса с хлоридом цинка колиtjfecTBO выявленных розеток наиболее высокое ив 1,4 - 1,8 раза превышает их число при инкубировании клеток в среде Хенкса, яе содержащем хлорида цинка.
Среда Хенкса Среда Хенкса с
;.,2-п.с
Среда Хенкса С:.;;::;:ZnC s. и 50% сы- . воротки
Среда Хенкса и.
57,,5 50% сыворотки
Пример2. Выявление Т-лимфоцитов в крови у крупного рогатого скота. Все операции Выявления розеток у крупногорогатого скота идентичны методике определения розеток у людей за исключением того, что слой мононуклеарных клеток образовался на границе слоев плазмы крови и смеси из фиколла 400-верографина, плотность которого была 1,069 при центрифугировании 1000 g в течение 80 мин.
В табл. 2 приведена характеристика розеткообразующих лимфоцитов в крови крупного рогатого скота.
Полученные результаты свидетельствуют о том, что введение в инкубируемую суспензию клеток 1-10 - 3- 10 г/мл (а для лимфоцитов крупного рогатого скота еще и 50% сыворотки) позволяет получить наибольшее количество сохранных розеток как в камере Горяева, так и на мазках, а число прилипших эритроцитов к розеткообразующим лимфоцитам зйачительно увеличено.
Предлагаемый способ позволяет с высокой точностью определить Т-лимфоциты как у людей, так и у крупного рогатого скота.
Таблица 1
5(3-10)
4(3-10) 9(3-17) 10(3-18)
11(3-18)
10(3-19)
46,Ot5,5
6(3-11)
5(3-12)
Формула изобретения
Способ определения Т-лимфоцитов путём центрифугирования крови с последующим отделением мононуклеарных клеток, инкубирования их с эритроцитами барана в среде Хенкса, отделением полученного осадка, ресуспендирования его и подсчета Т-лимфоТаблица
цитов, отличающийся тем, что, с целью поJP вышения точности способа, инкубирование проводят в среде Хенкса, дополнительно содержащей хлорид цинка в концентрации 1 10 - 3- 105 г/мл среды при 8 - 22°С.
Источники информации, принятые во внимание приЭкспертизе 35 I. Neurology 1976, 26, 10. с. 997 - 999
Авторы
Даты
1980-03-15—Публикация
1978-05-10—Подача