тет на щелочном агаре с 50 ЕД полимиксина.
Антигенные свойства.
Агглютинируется холерными диагностическими сыворотками «О и Огава.
Пример. Высушенную амиулированную культуру засевают на щелочной агар,
состоящий из 50% агара Мартена и 50 дрожжевого экстракта, и инкубируют в течение 48 ч при темнературе 32°С. Затем культуру смывают раствором трис-буфера, смытый агар измельчают и заливают 200 мл раствора трис-буфера. Экстракцию иронзводят нри темнературе 18-20°С. Через 18 ч экстрагированный агар нрофильтровывают через канроновую ткань и добавляют мертиолат в разведении 1 : 5000.
Полученный экзотоксин испытывают на биологических моделях.
1.Фактор кожной пронинаемости на взрослых кроликах (но Крейгу) на 3 животных. Препарат раститровывают двухкратно с 1/10 и вводят внутрикожно в количестве 0,1 мл. Учет проводят через 24 ч. Положительная реакция зарегистрирована в разведении 1/640-1/1280.
2.Фактор кожной проницаемости на 3 морских свинках весом 300-350 л. Положительная реакция получена в разведении 1/80.
3. Определение отечногенного эффекта в лапках белых мышей (но Филькенштейну). Берут белых мышей весом 18-20 г по 5-6 животных на дозу. В нодушечку задней лапки вводят препарат в объеме 0,5 мл. Контролем служит противоположная интактная лапка. Кроме того, 5-6 животным вводят экстракт среды выращивания. Учет результатов нроизводят через 48 ч. Вводят цельный препарат и в разведении 1/2, 1/4, 1/8. При введении цельного нренарата различия в весе оиытиой и контрольной лапок составляет 150-300 мг. Различия в весе лапок при введении среды составляют 3-10 мг.
4. Определение холерогенного эффекта на кроликах-сосунках (по Датта и Хаббу). Поворожденным крольчатам весом 100- 140 г внутрикишечно вводят цельный нрепарат в объеме 1 мл. Для контроля крольчатам вводят в том же объеме среду выращивания. Учет результатов проводят через 24 ч. Положительная холерогенная реакция наблюдается у 70-90% подопытных животных нри отрицательных реакциях у контрольных животных.
Использование изобретения нозволит улучшить профилактику и лечение холеры.
Формула изобретения
Штамм Vibrio El Tor 1310 серотипа Огава - продуцент холерного экзотоксина. Хранится в коллекции культур микроорганизмов Всесоюзного научно-исследовательского противочумного института «Микроб под номером 1310.
название | год | авторы | номер документа |
---|---|---|---|
Штамм бактерий VIвRIо сноLеRае сноLеRае серовара Инаба,используемый в качестве продуцента холерного токсина | 1987 |
|
SU1460075A1 |
Штамм бактерий VIвRIо сноLеRае еLтоR Серовара OGaWa КМ 1446/рС0107-2, используемый для получения холерного экзотоксина | 1986 |
|
SU1412306A1 |
АВИРУЛЕНТНЫЙ ШТАММ БАКТЕРИЙ Vibrio cholerae KM 263 БИОВАРА ЭЛЬТОР СЕРОВАРА ИНАБА - ПРОДУЦЕНТ ПРОТЕКТИВНОГО О1 АНТИГЕНА | 2010 |
|
RU2425867C1 |
Штамм гибридных культивируемых клеток животных MUS мUSсULUS L. - продуцент моноклональных антител к холерному энтеротоксину биотипа эльтор | 1990 |
|
SU1742325A1 |
АВИРУЛЕНТНЫЙ ТЕСТ-ШТАММ БАКТЕРИЙ Vibrio cholerae БИОВАРА eltor СЕРОВАРА Ogawa (ctxA-, tcpA-, toxR-, zot-), ИСПОЛЬЗУЕМЫЙ В ИММУНОЛОГИЧЕСКИХ, ГЕНЕТИЧЕСКИХ ИССЛЕДОВАНИЯХ И УЧЕБНОМ ПРОЦЕССЕ | 2004 |
|
RU2254371C1 |
Штамм бактерий VIвRIо сноLеRае сноLеRае OGaWa, используемый для получения холерного токсина | 1986 |
|
SU1400075A1 |
АВИРУЛЕНТНЫЙ ШТАММ БАКТЕРИЙ Vibrio cholerae КМ 262 БИОВАРА ЭЛЬТОР СЕРОВАРА ОГАВА - ПРОДУЦЕНТ ПРОТЕКТИВНОГО О1 АНТИГЕНА | 2010 |
|
RU2425868C1 |
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ПРЕПАРАТА БЕЛКА ОМР Т ДЛЯ МОДЕЛИРОВАНИЯ ПРОТИВОХОЛЕРНОГО ИММУНИТЕТА У ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫХ ЖИВОТНЫХ | 2017 |
|
RU2663102C2 |
ШТАММ БАКТЕРИЙ VIBRIO CHOLERAE КМ 138 СЕРОГРУППЫ 0139 - ПРОДУЦЕНТ ХОЛЕРНОГО 0139 АНТИГЕНА | 2000 |
|
RU2192463C2 |
Способ получения нехолерогенных цАМФ-негативных вариантов холерного вибриона | 1990 |
|
SU1773940A1 |
Авторы
Даты
1982-02-23—Публикация
1979-06-06—Подача