(54) СПОСОБ СТАБИЛИЗАЦИИ ГЛЮКОАМИЛАЗЫ
название | год | авторы | номер документа |
---|---|---|---|
Способ получения очищенных ферментных препаратов глюкоамилазы | 1977 |
|
SU721451A1 |
РЕКОМБИНАНТНЫЙ ШТАММ МИЦЕЛИАЛЬНОГО ГРИБА ASPERGILLUS AWAMORI - ПРОДУЦЕНТ КОМПЛЕКСА ФЕРМЕНТОВ ГЛЮКОАМИЛАЗЫ И КСИЛАНАЗЫ | 2011 |
|
RU2457246C1 |
СПОСОБ КОНЦЕНТРИРОВАНИЯ ГЛЮКОАМИЛАЗЫ ИЗ ГРИБНОЙ КУЛЬТУРЫ ASPERGILLUS AWAMORI (ШТАММ 120-77) | 1999 |
|
RU2163264C2 |
РЕКОМБИНАНТНЫЙ ШТАММ МИЦЕЛИАЛЬНОГО ГРИБА ASPERGILLUS AWAMORI - ПРОДУЦЕНТ ГЛЮКОАМИЛАЗЫ | 2011 |
|
RU2457247C1 |
ШТАММ МИЦЕЛИАЛЬНОГО ГРИБА ASPERGILLUS AWAMORI - ПРОДУЦЕНТ ГЛЮКОАМИЛАЗЫ | 2002 |
|
RU2245364C2 |
ШТАММ МИЦЕЛИАЛЬНОГО ГРИБА ASPERGILLUS AWAMORI - ПРОДУЦЕНТ ГЛЮКОАМИЛАЗЫ | 2000 |
|
RU2196821C2 |
Способ получения препарата глюкоамилазы | 1979 |
|
SU908796A1 |
ФЕРМЕНТАТИВНО ГИДРОЛИЗОВАННЫЕ ПШЕНИЧНЫЕ ОТРУБИ С ГЛЮКОАМИЛАЗНОЙ, ПРОТЕОЛИТИЧЕСКОЙ И КСИЛАНАЗНОЙ АКТИВНОСТЯМИ, И СПОСОБ ИХ ПОЛУЧЕНИЯ ПУТЕМ ТВЕРДОФАЗНОГО СБРАЖИВАНИЯ ПШЕНИЧНЫХ ОТРУБЕЙ С ПОМОЩЬЮ ASPERGILLUS NIGER | 2000 |
|
RU2246536C2 |
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ЛИМОННОЙ КИСЛОТЫ И КОМПЛЕКСА КИСЛОТОСТАБИЛЬНЫХ АМИЛОЛИТИЧЕСКИХ ФЕРМЕНТОВ | 2005 |
|
RU2294371C2 |
ШТАММ МИЦЕЛИАЛЬНОГО ГРИБА ASPERGILLUS ORYZAE - ПРОДУЦЕНТ КИСЛОЙ АЛЬФА-АМИЛАЗЫ | 2007 |
|
RU2354697C2 |
Изобретение относится к микробио логической промлшленности, а т,акже к крахмало-паточной, спиртовой, хлебопекарной , где ферментные препараты , глюкоамилазы широко применяются. Известен способ стабилизации dамилазы различными солями кальция, которые вводятся в препараты dl-амилазы во время или после очистки фермента t. Наиболее близким к предлагаемому по технической сущности и достигаемому эффекту является способ стабили зации амилолитического фермента, зак лючающийся во введении в культуральную жидкость комплексного стабилизатора с последующей ее очисткой, где в качестве комплексного стабилизатора используют водорастворимую кальци евую соль и органический агент - али фатический гликоль, имеющий следующую формулу: HOfCHj CH Ol H или пропандиол, а в некоторых случаях неионогенное моющее средство Г2} . Недостатком известного способа стабилизации водных растворов фер((«ента является невысокая остаточная активность фермента при длительном хранении (так через четыре недели в пробе t остаточная активность составляет 51%) , а также высокое процентное содержание органического стабилизатора ClO%) в ферментном растворе. Цель изобретения - удлинение сроков сохранения глюкоамилазной активности при комнатной температуре и стерильности ферментного препарата. Поставленная цель достигается тем, что в соответствии со способом стабилизации глюкоамилазы, заключающимся во введении в культуральную жидкость комплексного стабилизатора с последующей ее очисткой, в культуральную жидкость в качестве комплексного стабилизатора вводят формалин в количестве 0,1-0,3% совместно с в количестве 1,4-1,6%. пример . Проводят стабилизацию глюкоамилазиой активности культурапьной жидкости. Культуральную жидкость получают глубинным культивированием дрожжеподобного микроор-ганизма. Endbmyco psis sp.20-9 на среде следующего состава, %: Кукурузный экстракт 3 Кукурузный крахмал 1 Олеиновая кислота 0,2 Культуральную жидкость отделяют от биомассы на сепараторе АСГ-ЗМ. Полученный ферментный раствор отбира ют в колбы с притертой пробкой ( V 50 ь№ ) и туда же добавляют (стабилизаторы различной концентрации В качестве стабилизаторов используют формалин, низин, а также комплексный стабилизатор - формалин + низин. Опыты проводят при комнатной температуре. Через определенные промежутки времени (О, 5, 14, 24, 32, 68 сут) в пробах определяют глюкоамилазную активность глюкооксидазным методом, содержание белковых веществ методом Лоури, а также наличие бактериального заражения. Полученные данные приведены в табл. 1. Наибольшим стабилизирующим эффек том обладает комплексный стабилизатор, состоящий из формалина (0,2%) и низина (1,5%), обнаруживающий синергическое действие. На 32-ые сутки хранения потери глюкоамилазной активности составляет всего 8% по сравнению с контролем. В контроле з &тр же время хранения глюкоамилазна активность снижается на 56% (с 13,3 ед/мл до 5,8 ед/мл). Изменение концентрациикомплексного стабилиза тора от 0,2% до 1,5% на сутки хранения сопровождается сохранением ферментативной активности в образцах (7, 8, 9) на уровне 9,4-12,3 ед/ 1Дальнейшее увеличение дозировки ста билизатора до 2,0% (проба 10) приво дит к уменьшению глюкоамилазной активности, которая составляет 9 ,,0 ед/ При обработке культуральной жидкости формалином увеличение его дозировки от 0,2% до 1,5% сопровождается на 32-ые сутки хранения уменьшением глюкос1милазной активности в образцах (1, 2, 3) с 9,37 ед/мл до 6,25 ед/мл, в то время как содержание белка находится на уровне 4,95,95 мг/мл. Следовательно, оптимальное количество формалина в растворе - 0,2%, при этом активность фермента уменьшается по сравнению с контролем (13,3 ед/мл) на 30%. Наименьший стабилизирующий эффект проявляется при добавлении в культуральную жидкость одного низина, в этом случае падение активности на 32-ые сутки хранения составляет 48-60%. Удельная активность при обработке комплексным стабилизатором меньше по сравнению с активностью при обра-ботке формалином в связи с более высоким содержанием белка, что можно объяснить белковой природой низина, представляющего собой полипептид. На 32-ые сутки хранения в образцах с формалином (1, 2, 3) и комплексным стабилизатором (7, 8, 9,10) бактериальное заражение не обнаруживается, тогда как в контроле и в образцах с одним низином (4, 5, 6) бактериальное заражение отмечается уже на 5-ые сутки хранения. На 52-ые сутки стабилизации культуральной жидкости все образцы подвергают бактериальному заражению за исключением пробы № 3, содержащей 1,5% формалина, однако в этой пробе на 32-ые сутки хранения сохраняется только 47% глюкоамилазной активности. В табл. 2 приведены данные, характеризукяцие остаточную глюкоамилазную активность, выраженную в процентах к исходной пробе. Образцы, приведенные в этой таблице, содержат оптимальное количество стабилизатора. Результаты свидетельствуют, что при добавлении в культуральную жидкость Endomycopsis sp. 20-9 комплексного стабилизатора, состошдего из формалина в количестве 0,2%и низина в количестве 1,5%, удается в течение 32 сут сохранить на 92% глюкоамилазную активность и предотвратить бактериальное заражение. Реализация изобретения позволяет удлинить сроки сохранения глюкоамилазной активности при комнатной температуре и стерильности ферментного препарата.
(О
я
S
R ю
(О
н
N (N
м
г
м п
N
ffl
г-(
(N 00
О in
л
to f
Г1
tn te
rел
о
со
ш
00
ел
1Л
in
1О
N
CJ
гЧ СП
ло
fN
г
оо Г1
о
т
I-I
yt
00
u
гп
СП
оо о
г-i
(П
kO
ku
чэ
СГ1
У|
о
in Ц
со
ГМ
Г-СП
тН
гЧ
00
со
Ч
О
к
о
t-t
н
о
(N гН П
о
гН
tH
r
гН
т-1
Ч
ГМ 00
о
гЧ
1Л
U7
00
ш
1Л
о
ЧГ)
г
о
гН
(
т
гю
t-j
о см
Ш
04 О
м о
«
Формула изобретения
Способ стабилизации глюкоамилазы, заключающийся во введении в культуральную жидкость комплексного стабилизатора с последующей ее очисткой, отличающийся тем, что, с целью удлинения сроков сохранения глюкоамилазной активности при комнатной температуре и стерильности ферментного препарата, в культуральТаблица
ную жидкость в качестве комплексного стабилизатора вводят формалин в количестве 0,1-0,3% совместно с низином в количестве 1,4-1,6%.
Источники ИНфОрМсЩИИ,
принятые во внимание при экспертизе
кл, С 12 D опублик. 1976 (прототип)
Авторы
Даты
1981-10-15—Публикация
1980-01-10—Подача