Изобретение относится к микробиологии и касается способа получения ферментов нуклеинового обмена, в частности рестриктаз.
Целью изобретения является повышение выхода фермента.
Способ заключается в том, что штамм F.okeanokoites выращивают на жидкой среде следующего состава,г/л:
Пептон 9,0 - 11,0
Дрожжевой
экстракт 4,0 - 6,0
NaCl 25,0 - 30,0
КС10,5 - 1,0
CaCl2-6 Н,20 . 2,0 - 3,0 MgS04-7 6,0 - 7,5
Глюкоза 0,5-1,5
р-Н7,2,
культивирование проводят при 27-29°С до стационарной фазы роста, что соответствует оптической плотности 2,2- 2,6 о.е. при нМ. Клетки разрушают ультразвуком и целевой продукт получают последовательной хроматогра фической очисткой на фосфоцеллюлозе Р-11, бензил-ДЕАЕ-целлюло36 и фосфоцеллюлозе Е-11 .
Культивирование бактерий на среде имеющей сбалансированный состав со- лей, ,и при оптимальной температуре 27-29 С приводит не к увеличению выхода биомассы, а к ее обогащению именно ферментом рестрикции и повышению выхода целевого продукта в 8-10
раз по сравнению с известным способом.
Выбор температуры культивирования обусловлен следующими эксперименталь ными фактами: изменение на 4-5°С в любую сторону от оптимального интервала (27-29 с) уменьшает скорость роста F.okeanokoites в 2 раза и не позволяет получить более высокий вы- ход фермента.
Результаты экспериментов по подбору компонентов питательной среды для культивирования F.okeanokoites представлены в таблице.
Наиболее оптимальной и сбалансированной по составу солей является среда 15.
Выход фермента в логарифмической фазе роста повышается в 1,1-1,2 раза по сравнению со стационарной фазой, однако полученный препарат фермента не стабилен при хранении (50% инактивация за 1 н еделю) .
о
5
0 5
O
5
„ с
0
5
Установлено, что для получения стабильного при хранении препарата фермента сбор урожая бактерий наиболее технологично производить на стадии стационарной фазы роста.
Пример. Получение рестрикта- зы Fok I.
Культивирование F.okeanokoites.
При культивировании клеток используют химреактивы отечественного производства без дополнительной очистки.
Для выращивания бактерий готовят растворы пита-т ельной среды.
Раствор 1: Пептон 10 г Дрожжевой
экстракт 5 г NaCl 27 г КС10,7 г
Вода 900 мл Раствор кипятят 5 мин, охлаждают до комнатной температуры, фильтруют через фильтровальную бумагу, доводят рН до 7,2 с помощью 5 н. раствора NaOH.
Раствор 2: MgS04-7H,0 7 г
Вода 50 мл
Раствор 3: 2,2 г Вода 40 мл
Раствор 4: Глюкоза 1 г
Вода 10 мл
Все растворы стерилизуют в автоклаве при 40 мин, затем сливают в стерильных условиях непосредственно перед приготовлением питательной среды.
Клетки бактерий подращивают на твердой питательной среде при 28 С в течение суток, затем готовят иноку- лят для засева ферментера. Объем ино- кулята 1/10 часть от объема ферментера. Культивирование проводят в ферментере (объем 20 л) при 28 С и аэрации 20 л/ч. Величина рН в процессе роста поддерживается автоматически на уровне 7,2 добавлением 0,2 н. NaOH.
Клетки выращивают до стационарной .фазы (оптическая плотность 2,5 при нм). Клетки собирают центрифугированием при 5000 g в течение 10 мин. Выход биомассы 3,5 г/л.
Выделение и очистка рестриктазы.
Все процедуры по выделению и очистке фермента проводят при О - 4°С. 4 г клеток суспендируют в 20 мл 0,01М трис-НС1 буфера, рН 7,5, содержащего 0,1% тритона Х-100, разрушают на ультразвуковом дезинтеграторе 4 раза по 40 с, клеточный дебрис отделяют
центрифугированием при 5000xg в течение 20 мин. Полученный грубый экстракт наносят на колонку с фосфоцеллю- лозой Р-11 размером 1, см, уравновешенную 0,02 М трис-HGl буфером, рН 7,5, содержащим 1 мМ 2-меркаптоэта- нола, 0,5 мМ ЭДТА и 5% глицерина (буфер А). Несорбированный на колонке материал элюируют 50 мл буфера А. Фермент эхооируют 20 мл буфера А, содержащего 1 М NaCl и диализуют лротив буфера Б (0,02 М калий фосфатный буфер, рН 7,5, содержащий 1 мМ 2-мер- каптоэтанола, 0,5 мМ ЭДТА и 5% глице- рина).
После диализа раствор фермента осветляют центрифугированием при в течение 5 мин и супернатант наносят на колонку размером 0, см с бензил-ДЕАЕ-целлюлозой.
Несорбированный материал, содержащий фермент, собирают и наносят на колонку размером 0,9 х2 см с фосфо- целлюлозой Р-11, уравновешенной буфе- ром Б, .Фермент элюируют 40 мл линейного градиента NaCl (0,1 М) в буфере Б. Фракции, содержащие растриктазу (элюируемые при 0,4 - 0,45 М NaCl), собирают и диализуют против буфера Б содержащего 50% глицерина. Выход продукта составляет 2000 ед./г биомассы. Полученный препарат имеет активность 3000 ед./мл. Активность фермента определяют в реакционной смеси которая в 20 мкл содержит 1 мкг ДНК фага Л, 0,02 М трис-НС1 буфера, рН 7,5, 0,01 М MgCl, 0,02 М КС1, 1 мМ 2-меркаптоэтанола.
Реакцию проводят при 37 С в течение 1 ч, затем пробы подвергают элекрофорезу в 1%-ном агарозном геле. За единицу активности принимают минимальное количество фермента, необходимое для полного расщепления 1 мкг ДНК фаза А при данных условиях реакции.
Отсутствие неспецифических эндо- нуклеаз и фосфотаз подтверждается
высокоэффективным лигированием фрагментов ДНК фага Д, полученных в результате гидролиза полученным препаратом фермента. Правильность лйгиро- вания подтверждается повторным гидролизом рестриктазой Fok I с образованием аналогичных фрагментов.
Формула изобретения
Способ получения эндонуклеазы рестрикции Fok I из Flavobacterium okeanokoites, включаюш11Й культивирование клеток в жидкой питательной среде, содержащей в качестве источника азота белковый гидролизат,-в качестве источника витаминов - дрожжевой экстракт, хлористый натрий, глюкозу и воду, разрушение клеток ультразвуком, хроматографию полученного экстракта на фосфоцеллюлозе и очистку целевого продукта ионообменной хроматографией, отличающийся тем, что, с целью noBbmie- ния выхода фермента, в качестве продуцента используют Flavobacterium okeanokoites ВКПМ-2835, в среду для культивирования дополнительно вводят хлористый кальций, хлористый калий и сульфат магния, в качестве белкового гидролизата используют пептон при
следующем соотношении комопнентов,
/
г/л:
Пептон
Дрожжевой экстракт Хлористый натрий Хлористый калий Хлористый кальций Сульфат магния Глюкоза Вода
Остальное
45
культивирование ведут при 27-29 С до достижения стационарной фазы роста, а при очистке целевого продукта ионообменную хроматографию проводят на бензил-ДЭАЭ-целлюлоза с последующей рехроматографией на фосфоцеллюлозе.
название | год | авторы | номер документа |
---|---|---|---|
Способ получения рестриктазы С @ I | 1988 |
|
SU1546485A1 |
Способ получения эндонуклеазы-рестриктазы, расщепляющей последовательность нуклеотидов 5 @ =G @ CGC=3 @ | 1988 |
|
SU1576565A1 |
Способ получения эндонуклеаз-рестриктаз, обладающих способностью узнавать и расщеплять последовательности нуклеотидов 5 @ -GPUCGPYC-3 @ и 5 @ -CATG-3 @ | 1987 |
|
SU1458388A1 |
Способ получения эндонуклеазы рестрикции | 1982 |
|
SU1095645A1 |
Штамм бактерий BacILLUS SpecIeS 21-продуцент сайт-специфической эндонуклеазы RSe21 1 | 1988 |
|
SU1518372A1 |
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ЭНДОНУКЛЕАЗЫ РЕСТРИКЦИИ BSE 21 I | 1999 |
|
RU2184777C2 |
Штамм бактерий BacILLUS coaGULaNS - продуцент рестриктазы Всо AI | 1990 |
|
SU1761804A1 |
Штамм бактерий ЕSснеRIснIа coLI RFL - продуцент рестриктазы Е со 105I | 1989 |
|
SU1631081A1 |
Способ получения рестриктазы SFa NI,способной узнавать и расщеплять последовательность нуклеотидов 5 @ -GCATCN @ ,3 @ -CGTAGN @ | 1987 |
|
SU1442546A1 |
Питательная среда для культивирования бактерий кLевSIеLLа рNеUмоNIае ВКПМ в-1823 - продуцента рестриктазы Крп I | 1986 |
|
SU1402615A1 |
Изобретение относится к микробиологии, в частности к способу получения рестриктаз. Целью изобретения является повьшение выхода рект- риктазы Fok I. Для этого штамм-продуцент Flavobacterium okeanokoites В-2835 культивируют на жидкой питательной среде, содержащей, г/л: пептон 9,0-11,0; дрожжевой экстракт 4,0-6,0; NaCl 25,0-30,0; КС1 0,5- 1,0; ,,20 2,0-3,0; MgS04 7H20 6,0-7,5; глюкоза 0,5-1,5, до достижения стационарной фазы роста с последующим вьщелением и очисткой рест- риктазы, включающей 3 хроматографи- ческие стадии. Способ позволяет увеличить выход фермента в 8-10 раз.. Выход фермента 2000 ед. на 1 г биомассы, активность препарата 3000 ед./мл. 1 табл. с . (Л 4ik О Од а о
Holdeman L.V., Gate Е.Р | |||
Мог- ore W.E.C | |||
Очаг для массовой варки пищи, выпечки хлеба и кипячения воды | 1921 |
|
SU4A1 |
Virginia Polytechnic Institute and State University, Black- burg, 1977 | |||
Sugisaki H., Kanazawa S | |||
New restriction endonucleases from Flavobac- terium okeanokoites (Fok I) and Mic- rococus luteus (Mlu I), Gene, 16, 73- 78, 1981. |
Авторы
Даты
1988-06-30—Публикация
1986-05-15—Подача