ШТАММ БАКТЕРИЙ SALMONELLA TYPHIMURIUM Т-10 ВМС160 ДЛЯ ИММУНИЗАЦИИ ПРОТИВ ВИРУСА ИММУНОДЕФИЦИТА ЧЕЛОВЕКА Российский патент 2002 года по МПК A61K39/12 A61K39/112 C12N1/21 C12N1/21 C12R1/42 

Описание патента на изобретение RU2192886C1

Изобретение относится к иммунологии и может быть использовано для создания иммунитета против вируса иммунодефицита человека.

Известен штамм бактерий Salmonella typhimurium SL 7207, см. "Induction of mucosal and systematic responses against human immunodeficiency virus type 1 glycoprotein 120 in mice after oral immunisation with a single dose of a Salmonella-HIV vector", Shaoguuang Wu, D.B.Pascual, G.K.Lewis, D.M. Hone, 1997, AIDS Research and Human Retroviruses vol. 13, N 14, pp. 1187-1193 (копия ссылки прилагается). Штамм вводили мышам per os. В результате у мышей индуцировали выраженный иммунный ответ к вирусному белку gp 120 вируса иммунодефицита человека; клетки сальмонелл секретируют данный вирусный белок в периплазму бактериальных клеток; наблюдается пролиферативный ответ спленоцитов иммунизированных мышей на 14 сутки после иммунизации per os; в основном индуцировались Тh 1 и Тh 2-ответы, а также отмечена индукция IgA-секретирующих клеток в lamina propria и в мезентерических лимфоузлах.

Однако следует отметить, что в данном аналоге существенным недостатком является то, что белок, синтезируемый бактериальной клеткой, не гликозилируется; кроме того, данный штамм не индуцирует антитела к поверхностному белку gp 160 вируса иммунодефицита человека, вследствие этого не возникает полноценный иммунный ответ.

Известен также штамм бактерий Salmonella typhimurium SL 7207 (aro A his G 46), содержащий эукариотические вектора, экспрессирующие два укороченных белка (Act А и листериолизин) патогенной бактерии Listeria monocytogenes, см. "Oral somatic transgene vaccination using attenuated S. typhimurium", A. Darji, C. A.Gusman, B.Girstel, P.Wachholz, K.N.Timmis, J.Wehland, T.Chakraborty, S. Weiss, 1997, Cell vol.91, pp. 765-775 (копия ссылки прилагается). Мышей иммунизировали per os. Наблюдали образование цитотоксических лимфоцитов, Т-хелперных клеток и антител к данным белкам у иммунизированных таким образом животных, а также их невосприимчивость к внутривенному введению Listeria monocytogenes в дозе 10•LD50.

Недостатком этого штамма является отсутствие способности вызывать иммунный ответ в отношении вируса иммунодефицита человека.

Известен штамм бактерий Salmonella typhimurium SL 3621, см. "Potential live vaccines for HIV", M.S.Burnett, N.Wang, M.Hofmann, G.B.Kitto, Vaccine (2001) vol.19, pp. 735-742 (копия ссылки прилагается). Эти бактерии синтезируют белок Pol вируса иммунодефицита человека в виде слитного белка, Pol-OmpA. Мышей иммунизировали per os. После иммунизации мышей клетками данных бактерий наблюдается появление специфического иммуноглобулина А к целевому белку в экстактах фекалий, появление пролиферативного клеточного ответа, а также индукция цитотоксических лимфоцитов селезенки, специфичных к клеткам, представляющим на своей поверхности фрагменты полимеразы.

Данное техническое решение принято в качестве пропотипа настоящего изобретения.

Его недостатком является то обстоятельство, что этот штамм не индуцирует антитела к поверхностному белку gp 160 вируса иммунодефицита человека. Вследствие этого не возникает антител, реагирующих с поверхностью вирусных частиц, что обусловливает недостаточную иммунизацию организма к вирусу иммунодефицита человека.

Задачей настоящего изобретения является получение штамма бактерий, способных вызвать эффективную иммунизацию организма в отношении вируса иммунодефицита человека.

Для решения указанной задачи предлагается штамм бактерий Salmonella typhimurium T-10 ВМС160, обладающий высокой способностью вызывать выраженную и действенную иммунизацию к вирусу иммунодефицита человека.

Штамм Salmonella typhimurium T-10 BMC160 получен из штамма Salmonella typhimurium T-10 (cya, CRP). При помощи генетической трансформации в исходный штамм введена плазмида рВМС-160, обеспечивающая синтез белка gp160 вируса иммунодефицита человека в клетках млекопитающих и человека и несущая также ген устойчивости к ампициллину.

Этот штамм депонирован в Коллекции микроорганизмов ВНИИ сельскохозяйственной микробиологии под номером ВНИИСХМ422-Д от 16.07.2001. Идентификация штамма проведена по "Определителю бактерий Берги"; М., 1997.

Культурально-морфологические признаки:
Морфология: грамотрицательные палочки, средних размеров, расположены хаотично.

Культуральные свойства: растет на мясо-пептонном агаре, глюкозоминимальном агаре Дэвиса, средах Мак-Конки, Левина, Кауфмана, колонии в S-форме мелких размеров через 18 часов роста при 37oС. В мясо-пептонном бульоне, желчном бульоне, жидкой глюкозоминимальной среде А (Дэвиса) - диффузное помутнение через 18 часов роста. В цитратминимальной среде (Дэвиса) - отсутствие роста.

Резистентность к антибиотикам: на всех вышеперечисленных средах растет в присутствии ампициллина (100 микрограммов/мл)
Антигенная структура:
O4,12 Hi1,2
Биохимические свойства:
Не утилизирует цитрат на агаре Симмонса, не продуцирует индол, не расщепляет мочевину, не обладает фенилаланилтрансаминазой, реакция Фогес-Проскауэра - отрицательная; продуцирует сероводород в течение 48 часов, обладает лизин- и орнитилкарбоксилазными активностями и аргининдегидролазной активностью; ферментирует глюкозу, не ферментирует лактозу, сахарозу, мальтозу, сорбит, инозит, дульцит, адонит; в течение 48 часов ферментирует рамнозу, маннит, трегалозу. Желатину не разжижает.

Вирулентность:
Лабораторные мыши белые, беспородные, 12-14 г ЛД50-2,5•106 КОЕ (колониеобразующих единиц) после внутрибрюшинного заражения.

Чувствительность к бактериофагам:
Чувствителен к бактериофагу Р22.

Плазмидный профиль:
Плазмида рВМС-160 с молекулярной массой 5,8 мД. Данная плазмида получена авторами и введена в клетки сальмонеллы известным способом и обеспечивает синтез белка gp l60 вируса иммунодефицита человека в эукариотических клетках.

Пример 1.

Готовили жидкую питательную среду: Пептон 10 г/л. Дрожжевой экстракт 5 г/л, натрий хлористый 10 г/л, к которой после автоклавирования добавляли ампициллин до конечной концентрации 100 микрограммов/миллилитр. 100 миллилитров вышеуказанной среды помещали в колбу объемом 1 литр, после чего засевали материалом из одной колонии, выросшей на агаризованной плотной питательной среде такого же состава. Колбу инкубировали в качалке при температуре +37oС и 250 об/мин в течение 18 часов, после чего определяли количество бактерий в одном миллилитре, оказавшееся равным 2•108. Бактерии концентрировали в 10 раз и полученной суспензией и дважды, с перерывом в 2 недели, иммунизировали лабораторных мышей перректально по 2•108 живых клеток на иммунизацию, еще через 7 дней животных забивали, выделяли спленоциты, которые смешивали с сингенными клетками-мишенями, экспрессирующими поверхностный белок вируса иммунодефицита человека и контрольными клетками, не экспрессирующими данный белок. После совместной инкубации в течение 5 часов распад клеток-мишеней определяли известным способом. Результаты представлены в табл. 1.

Пример 2.

Для иммунизации были использованы мыши линии BALB/C массой 12 г. Животным вводили перорально или перректально суспензию клеток рекомбинантной сальмонеллы, содержащих плазмиду, по 109 живых клеток на каждую мышь на одну иммунизацию. Животных иммунизировали дважды: в день 0 и на 14-е сутки после первой иммунизации. В качестве отрицательного контроля использовали исходный штамм Salmonella typhimurium T-10. Оценку пролиферативного клеточного ответа спленоцитов животных проводили известным методом и выражали в виде индекса пролиферации. Результаты представлены в табл. 2.

Как видно из таблицы, спленоциты животных, иммунизированных Salmonella typhimurium T-10 ВМС-160 ректально, сохраняют способность к пролиферации при добавлении лизата вируса иммунодефицита человека вплоть до 81 дня после первой иммунизации.

Пример 3.

Лабораторных мышей линии BALB/C весом 12-16 г иммунизировали перорально и перректально суспензией клеток Salmonella typhimurium T-10 BMC160 и Salmonella typhimurium T-10, по 108 клеток на мышь, после чего в сроки, указанные в таблице, определяли титры антител к очищенному лизату вируса иммунодефицита человека в сыворотках крови иммунизированных животных. Результаты представлены в табл. 3.

Как видно из таблицы, иммунизация мышей Salmonella typhimurium T-10 BMC160 вызывает образование антител к вирусу иммунодефицита человека.

Похожие патенты RU2192886C1

название год авторы номер документа
ШТАММ БАКТЕРИЙ SALMONELLA ENTERIDITIS E-23 BMC120 ДЛЯ ИММУНИЗАЦИИ ПРОТИВ ВИРУСА ИММУНОДЕФИЦИТА ЧЕЛОВЕКА 2001
  • Козлов А.П.
  • Воробьев А.А.
  • Бойченко М.Н.
  • Климов Н.А.
  • Мурашев Б.В.
  • Машарский А.Э.
  • Романович А.Э.
  • Духовлинов И.В.
  • Духовлинова Е.Н.
RU2192277C1
РЕКОМБИНАНТНЫЙ АТТЕНУИРОВАННЫЙ ШТАММ БАКТЕРИЙ SALMONELLA TYPHIMURIUM T10/PKHBC - ПРОДУЦЕНТ КОРОВОГО АНТИГЕНА ВИРУСА ГЕПАТИТА В 2002
  • Карпенко Л.И.
  • Веремейко Т.А.
  • Игнатьев Г.М.
  • Ильичев А.А.
  • Бойченко М.Н.
  • Воробьев А.А.
RU2216590C1
РЕКОМБИНАНТНЫЙ АТТЕНУИРОВАННЫЙ ШТАММ БАКТЕРИЙ SALMONELLA ENTERIDITIS Е-23/PGEX-2T-TBI КАК КАНДИДАТ ДЛЯ КОНСТРУИРОВАНИЯ ЖИВОЙ ВАКЦИНЫ ПРОТИВ ВИРУСА ИММУНОДЕФИЦИТА ЧЕЛОВЕКА 2002
  • Карпенко Л.И.
  • Некрасова Н.А.
  • Игнатьев Г.М.
  • Ильичев А.А.
  • Бойченко М.Н.
  • Воробьев А.А.
RU2237089C2
РЕКОМБИНАНТНАЯ ПЛАЗМИДНАЯ ДНК PCDNA-TCI, ОБЕСПЕЧИВАЮЩАЯ ЭКСПРЕССИЮ ИСКУССТВЕННОГО ГЕНА TCI В КЛЕТКАХ ЭУКАРИОТ, И РЕКОМБИНАНТНЫЙ АТТЕНУИРОВАННЫЙ ШТАММ БАКТЕРИЙ SALMONELLA ENTERITIDIS E-23/PCDNA-TCI КАК КАНДИДАТ ДЛЯ КОНСТРУИРОВАНИЯ ЖИВОЙ ДНК-ВАКЦИНЫ ПРОТИВ ВИРУСА ИММУНОДЕФИЦИТА ЧЕЛОВЕКА 2003
  • Карпенко Л.И.
  • Бажан С.И.
  • Некрасова Н.А.
  • Белавин П.А.
  • Данилюк Н.К.
  • Серегин С.В.
  • Бабкина И.Н.
  • Игнатьев Г.М.
  • Агафонов А.П.
  • Бойченко М.Н.
  • Воробьев А.А.
  • Ильичев А.А.
  • Сандахчиев Л.С.
RU2248396C2
СУППОЗИТОРИИ ДЛЯ ИММУНОПРОФИЛАКТИКИ ВИРУСНЫХ ИНФЕКЦИЙ 2004
  • Карпенко Лариса Ивановна
  • Некрасова Надежда Александровна
  • Веремейко Татьяна Александровна
  • Левагина Галина Михайловна
  • Терещенко Тамара Анатольевна
  • Малахова Татьяна Валерьевна
  • Ильичев Александр Алексеевич
  • Масычева Валентина Ивановна
  • Игнатьев Георгий Михайлович
  • Агафонов Александр Петрович
RU2296560C2
РЕКОМБИНАНТНАЯ ПЛАЗМИДНАЯ ДНК pTBI-HBsAg, СОДЕРЖАЩАЯ ХИМЕРНЫЙ ГЕН TBI-HBsAg ПОД КОНТРОЛЕМ ПРОМОТОРА p7.5K ВИРУСА ОСПОВАКЦИНЫ, И ШТАММ РЕКОМБИНАНТНОГО ВИРУСА ОСПОВАКЦИНЫ, ВЫЗЫВАЮЩИЙ ИММУННЫЙ ОТВЕТ ПРОТИВ ВИЧ И ГЕПАТИТА B ЧЕЛОВЕКА В ОРГАНИЗМЕ ЖИВОТНЫХ 2001
  • Щелкунов С.Н.
  • Рязанкин И.А.
  • Агеенко В.А.
  • Игнатьев Г.М.
  • Бабкин И.В.
RU2194075C2
РЕКОМБИНАНТНАЯ ПЛАЗМИДНАЯ ДНК РВМС-QP120(A)M-1 ДЛЯ ИММУНИЗАЦИИ ПРОТИВ ВИРУСА ИММУНОДЕФИЦИТА ЧЕЛОВЕКА 2003
  • Козлов А.П.
  • Климов Н.А.
  • Машарский А.Э.
  • Полякова М.С.
  • Романович А.Э.
  • Галачьянц Ю.П.
  • Мурашев Б.В.
RU2227161C1
ВАКЦИНА ПРОТИВ ВИРУСНЫХ ИНФЕКЦИЙ 2000
  • Лебедев Л.Р.
  • Карпенко Л.И.
  • Ильичев А.А.
RU2217162C2
ПЕПТИД-ИМИТАТОР КОНСЕРВАТИВНОГО ЭПИТОПА БЕЛКА GP41 ВИРУСА ИММУНОДЕФИЦИТА ЧЕЛОВЕКА ТИПА 1, УЗНАВАЕМОГО ВИРУСНЕЙТРАЛИЗУЮЩИМИ МОНОКЛОНАЛЬНЫМИ АНТИТЕЛАМИ 2F5 (ВАРИАНТЫ) 2000
  • Туманова О.Ю.
  • Кувшинов В.Н.
  • Меламед Н.В.
  • Ушакова Т.А.
  • Машарский А.Э.
  • Ильичев А.А.
  • Климов Н.А.
  • Козлов А.П.
  • Сандахчиев Л.С.
RU2179980C2
РЕКОМБИНАНТНАЯ ПЛАЗМИДНАЯ ДНК PKHBC-33, СОДЕРЖАЩАЯ ГЕН КОРОВОГО АНТИГЕНА ВИРУСА ГЕПАТИТА B, ВКЛЮЧАЮЩЕГО ПОСЛЕДОВАТЕЛЬНОСТЬ ГЛАВНОГО НЕЙТРАЛИЗУЮЩЕГО ЭПИТОПА ПОВЕРХНОСТНОГО АНТИГЕНА ВИРУСА ГЕПАТИТА B (137 - 147), И ШТАММ БАКТЕРИЙ ESCHERICHIA COLI - ПРОДУЦЕНТ КОРОВОГО АНТИГЕНА ВИРУСА ГЕПАТИТА B С ЭКСПОНИРОВАННЫМ НА ЕГО ПОВЕРХНОСТИ ГЛАВНЫМ НЕЙТРАЛИЗУЮЩИМ ЭПИТОПОМ ПОВЕРХНОСТНОГО АНТИГЕНА ВИРУСА ГЕПАТИТА B (137 - 147) 1995
  • Карпенко Л.И.
  • Чикаев Н.А.
  • Меламед Н.В.
  • Ильичев А.А.
  • Байбородин С.И.
RU2112039C1

Иллюстрации к изобретению RU 2 192 886 C1

Реферат патента 2002 года ШТАММ БАКТЕРИЙ SALMONELLA TYPHIMURIUM Т-10 ВМС160 ДЛЯ ИММУНИЗАЦИИ ПРОТИВ ВИРУСА ИММУНОДЕФИЦИТА ЧЕЛОВЕКА

Изобретение относится к иммунологии. Штамм Salmonella typhimurium Т-10 BMC160 получен из штамма Salmonella typhimurium T-10. При помощи генетической трансформации в исходный штамм введена плазмида рВМС160, обеспечивающая синтез белка gp160 вируса иммунодефицита человека. Штамм Salmonella typhimurium Т-10 BMC160 обладает высокой способностью вызывать выраженную и действенную иммунизацию к вирусу иммунодефицита человека. Штамм используется для создания иммунитета против вируса иммунодефицита человека. 3 табл.

Формула изобретения RU 2 192 886 C1

Штамм бактерий Salmonella typhimurium, депонированный во ВНИИ сельскохозяйственной микробиологии под "ВНИИСХМ" 422-Д", для иммунизации против вируса иммунодефицита человека.

Документы, цитированные в отчете о поиске Патент 2002 года RU2192886C1

US 5733760, 31.03.1998
ШТАММ HOMINIS IMMUNODEFICITI VIRUS (HIV-I) ВИЧ-1 /РОССИЯ/ГМ-12-95 (RU 1295) СУБТИПА В ДЛЯ ДИАГНОСТИЧЕСКИХ И ВАКЦИННЫХ ПРЕПАРАТОВ 1996
  • Покровский В.В.
  • Кравченко А.В.
  • Юрин О.Г.
  • Ладная Н.Н.
  • Селимова Л.М.
  • Казеннова Е.В.
  • Санков М.Н.
  • Бобков А.Ф.
RU2121502C1
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ АТТЕНУИРОВАННОГО ШТАММА БАКТЕРИЙ SALMONELLA И ВАКЦИНА 1992
  • Ян Джордж Чарльз
  • Стивен Невилле Чэтфилд
  • Нейл Фрэзер Фейрветер
RU2126447C1
WO 9729768, 21.08.1997.

RU 2 192 886 C1

Авторы

Козлов А.П.

Воробьев А.А.

Бойченко М.Н.

Климов Н.А.

Мурашев Б.В.

Машарский А.Э.

Романович А.Э.

Духовлинов И.В.

Духовлинова Е.Н.

Сандахчиев Л.С.

Ильичев А.А.

Карпенко Л.И.

Некрасова Н.А.

Даты

2002-11-20Публикация

2001-08-24Подача