Изобретение относится к биотехнологии, в частности к культивированию изолированных тканей растений, и может быть использовано в селекционной практике для создания новых и улучшения уже известных сортов растений.
Одним из лимитирующих факторов выращивания изолированных тканей и клеток подсолнечника является низкая регенерация растений.
Известны способы получения расте- ний-регенерантов подсолнечника путем прямого и непрямого соматического эмбриогенеза, основанные на подборе типа эксплантата и оптимального состава среды. Было показано влияние гормонов 6-бензи- ламинопурина (БАП) и 2,4-дихлорфенокси- уксусной кислоты (2,4-Д) на ряд эксплантатов синтетического сорта Sannace, а именно на листья, участки котиледонов, апексы побегов, сегменты гипо- котиля. Оказалось, что среда (MS) Murashige and Skoog в сочетании с 2,4-Д и БАП и MS с 2,4-Д не вызывает образования побегов из каллуса ни для одного эксплантата, на среде MS с добавкой 1 мг/л БАП наблюдали регенерацию из глобулярного каллуса, полученного при культивировании
VI
чэ О
ел ю
сегментов гипокотиля. Недостаток этого метода в том, что он касается только одного редкого генотипа.
Известен прямой соматический эмбриогенез и регенерация растений из незрелых зародышей на среде с повышенным содержанием сахарозы. Через шесть дней начала культивирования показано образование белых соматических зародышей непосредственно из котиледона зиготических, без образования каллуса. Незрелые зародыши на 7-14-й день после опыления помещали на среды, содержащие MS соли; витамины среды Gamborgs (Bs); различные концентрации сахарозы (3%, 6%, 12%); в качестве добавок - 2,4-Д, дикамба, пиклорам, долил-3-уксусная кислота (ИУК), и а-наф- тил-уксусная кислота (НУК). Показано, что образование соматических зародышей не происходило на средах с 3% сахарозы и использованием в качестве добавок ИУК или НУК. Оптимальными являлись среды с 6 и 12% сахарозы в сочетании с 1 мг/л 2,4-Д или 3,3 мг/л дикамба. При помещении на данные оптимальные среды зрелых зароды.- шей или тканей асептических проростков (листьев, апексов, гипокотилей) прямого соматического эмбриогенеза не наблюдалось, Недостатки этого способа в том, что он применим только к определенному типу экс- плантатов, а именно к незрелым зародышам на 7-14 день после опыления (следовательно, малым гибкость), кроме того, степень регенерации полученных всходов остается еще не очень достаточной.
Из известных способов наиболее близким по своей сущности является способ регенерации подсолнечника, применимый к восьми сортам подсолнечника, описываю- щий регенерацию из незрелых зародышей на 4-21-й день после опыления. Культивирование по известному способу осуществляется в три этапа. Первый этап - образования эмбриогенных каллусов из клеток или тканей путем культивирования в питательной индуцирующей среде, содержащей соли и витамины MS, аминокислоты, 9% сахарозы, гормон цитокининового типа БАП в концентрации 0,5-1 мг/л. Второй этап - культивирование эмбриогенных каллусов для их роста, развития и прорастания в среде, содержащей соли и витамины MS, аминокислоты, 3% сахарозы, 0,1-0,5 мг/л БАП. Третий этап состоит в перенесении проростков для их роста и развития на среду, содержащую соли и витамины Bs, 1% сахарозы, гормон ауксинового типа - ИУК в концентрации 0,1-0,2 мг/л.
Недостатки этого способа состоят в необходимости осуществления изменений сред между первым, вторым и третьим этапами, что ведет к большей вероятности инфицирования, а также невысокой частоте регенерации.
Целью изобретения является повышение выхода растений-регенерантов и количества зон морфогенеза.
Способ предусматривает культивирование эксплантата подсолнечника в питательной индуцирующей среде, содержащей гормоны для инициации эмбриогенных каллусов и дальнейшее культивирование эмбриогенных каллусов для их роста, развития и прорастания, позволяющее получить рас- тения-регенеранты.
Использование способа приводит к множественному образованию побегов из одного зародыша путем непрямого соматического эмбриогенеза.
Способ осуществляется следующим образом.
Используют восемь генотипов подсолнечника: сорта Передовик, Надежный, Енисей, Ультраскороспелый, Ржаксинский; инбредную линию 36-29; две гибридные линии М 1 65/1 А х НА 234 А х К 3064.
В качестве эксплантата для индукции каллуса используют незрелые зародыши на 9-21-й день после опыления. Изолированные в асептических условиях незрелые зародыши помещают на питательную среду MSc3% сахарозы, дополненную5 г/л КМОз, 100 мг/л инозитола, 500 мг/л казаминовых кислот, 0,5 мг/л БАП и 5 мг/л НУК с дальнейшим получением морфогенетического каллуса. Каллусную ткань выращивают в термостате при t 26-28° С, далее при фотопериоде 16 ч день - 8 ч ночь при t 26-28° С с перенесением каждые 25-30 дней на свежую питательную среду. Затем после роста каллусной ткани отделенные побеги переносят на среду для корнеобразования, содержащую соли Вб, 0,5% сахарозы, 2 мг/л ИМК, 0,5 мг/л пиридоксина HCI.
П р и м е р 1. Растения подсолнечника сорта Ржаксинский выращивают в теплице в сосудах с почвой. В момент цветения каждое растение отмечают этикеткой с указанием даты цветения. На 9-21-й день после опыления семянки стерилизуют путем погружения на 1 мин в 50%-ный этанол, далее на 10 мин в 9%-ный раствор продажного хлорамина Б, затем промывают трижды стерильной дистиллированной водой. Изолированные в асептических условиях зародыши размером 0,1-0,8 см помещают на среду, содержащую соли и витамины MS,
3% сахарозы, 4 г/л КМОз, 90 мг/л инозито- ла, 400 мг/л казаминовых кислот, 0,4 мг/л БАП, 4 мг/л НУК. В течение первых 20 дней клеточные культуры выращивают в термостате при t 26-28° С, далее - при фОтопе- риоде 16 ч день - 8 ч ночь при t 26-28° С. Через 25-30 дней выросший каллус пересаживают на свежую питательную среду, одновременно отделяя образовавшиеся побеги и перенося их на среду для корнерб- разования, содержащую соли Bs, 0,5% сахарозы, 1 мг/л ИМК, 0,4 мг/л пиридоксин HCI. В каждом пассаже учитывают количество полученных растений-регенерантов и образовавшихся зон морфогенеза.
П р и м е р 2. Способ осуществляется аналогично примеру 1, различие состоит в составе питательных сред для индукции каллуса и корнеобразования. Питательная индуцирующая среда содержит соли и вита- мины MS, 3 % сахарозы, 5 г/л КМОз, 100 мг/л инозитола, 500 мг/л казаминовых кислот, 0,5 мг/л БАП, 5 мг/л НУК. Вторая среда содержит соли Bs, 0,5% сахарозы, 2 мг/л ИМК, 0,5 мг/л пиридоксина HCI.
ПримерЗ. В среду для индукции каллуса, содержащую соли и витамины MS, 3% сахарозы, добавляют 6 г/л КМОз, 1tO мг/л инозитола, 600 мг/л казаминовых кислот, 0,6 мг/л БАП и 6 мг/л НУК. Среду для корнеобразования, содержащую соли Bs, 0,5 % сахарозы дополняют Змг/л ИМК и 0,6 мг/л пиридоксин НС.. Остальные приемы осуществляют аналогично примеру 1.
П р и м е р 4. Незрелые зародыши сорта Енисей, собранные на 9-21-й день после опыления, когда они достигают размеров 0,1-0,8 см. стерилизуют, изолируют в асептических условиях и далее процесс культивирования ведут по примеру 2.
Аналогично проводят испытания с другими генотипами подсолнечника.
Предлагаемый способ ускорил в 1,2 раза по сравнению с известным процесс обра- зования зон морфогенеза и зачатков побегов путем непрямого соматического эмбриогенеза. Через 12-14 дней наблюдали образование зон морфогенеза и зачатков побегов на индуцирующей питательной среде. Повысилась частота образования морфогенетических линий в 1,5 раза, увеличилось число множественных зон морфогенеза в 4-6 раз.
Предлагаемый способ позволит получить регенерацию подсолнечника путем непрямого соматического эмбриогенеза.
Формула изобретения Способ получения регенерантов подсолнечника в культуре соматических клеток, включающий эксплантацию незрелых зародышей на модифицированную питательную среду Мурасиге-Скуга, получение на ней морфогенетического каллуса, регенерацию побегов, перенос их на модифицированную питательную среду Гамборга Bs для корнеобразования и адаптацию полученных растений к условиям открытого грунта, отличаю щ и и с я тем, что , с целью повышения выхода растений-регенерантов и количества зон морфогенеза, получение каллуса и регенерацию побегов осуществляют в один этап с добавлением в питательную среду 4000-6000 мг/л нитрата калия, 90-110 мг/л инозитола, 400-600 мг/л казаминовых кислот, 0,4-0,6 мг/л 6-бензи- ламинопурина, 4-6 мг/л а-нафтилуксусной кислоты и корнеобразование проводят в присутствии 1-3 мг/л индолилмасляной кислоты, 0,4-0,6 мг/л пиридоксина HCI.
название | год | авторы | номер документа |
---|---|---|---|
Способ размножения гречихи IN VIтRо | 1988 |
|
SU1704715A1 |
Способ регенерации растений подсолнечника | 1987 |
|
SU1727514A3 |
Способ получения растений-регенерантов чая | 1988 |
|
SU1621825A1 |
Способ микроклонального размножения ели обыкновенной ин витро | 1990 |
|
SU1761057A1 |
СПОСОБ ПОВЫШЕНИЯ КОЭФФИЦИЕНТА РАЗМНОЖЕНИЯ КАПУСТЫ БЕЛОКОЧАННОЙ В УСЛОВИЯХ IN VITRO | 2013 |
|
RU2538163C1 |
Способ размножения растений сорго @ @ | 1982 |
|
SU1107799A1 |
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ РАСТЕНИЙ-РЕГЕНЕРАНТОВ ИРИСА МЕЧЕВИДНОГО (I. ENSATA THUNB.) IN VITRO | 2011 |
|
RU2481766C1 |
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ РАСТЕНИЙ - РЕГЕНЕРАНТОВ IN VITRO | 1992 |
|
RU2027757C1 |
Способ культивирования ткани пшеницы | 1987 |
|
SU1458386A1 |
Способ регуляции морфогенетической активности каллусной ткани лекарственных растений in vitro | 2022 |
|
RU2798292C1 |
Изобретение относится к биотехнологии, в частности к культивированию изолированных тканей растений и может быть использовано в селекционной практике для создания новых и улучшения существующих сортов растений. Целью изобретения является повышение выхода растений-регене- рантов и количества зон морфогенеза. Способ предусматривает получение из незрелых зародышей растений регенерантов путем двухэтапного культивирования на модифицированных питательных средах Му- расиге-Скуга и Гамборга Bs. ы fe
Greco В., Tanzarella O.A., Carrosso G., Blanco A | |||
Callus induction and shoot regeneration In sunflower (Helianthus annuus L) Plant | |||
Sci Lett., 1984, v | |||
Коридорная многокамерная вагонеточная углевыжигательная печь | 1921 |
|
SU36A1 |
Способ подготовки рафинадного сахара к высушиванию | 0 |
|
SU73A1 |
Murashige T | |||
and Skoog F | |||
A revised medium of rapid growth and bioassays with tobacco tissue culture | |||
Physiol | |||
Plant., 1962, v | |||
Прибор для нагревания перетягиваемых бандажей подвижного состава | 1917 |
|
SU15A1 |
Способ смены деревянных мостовых ферм | 1922 |
|
SU473A1 |
Finer I.I | |||
Direct somatic embriogenesis and plant regeneration from, immature embryos of hybrid sunflower (Helianthus annuus L) on a high sucrose - containing medium | |||
Plant | |||
Cell | |||
Reports., 1987, v | |||
Приспособление для точного наложения листов бумаги при снятии оттисков | 1922 |
|
SU6A1 |
Электромагнитный счетчик электрических замыканий | 1921 |
|
SU372A1 |
GamborgO | |||
L, Miller R.A., Ojlma K | |||
Nutrient requirements of suspension cultures of soybean rootcelfs | |||
Exp | |||
Cell | |||
Res., 1968, v | |||
Устройство для выпрямления многофазного тока | 1923 |
|
SU50A1 |
Двухколейная подвесная дорога | 1919 |
|
SU151A1 |
ФОТОЭЛЕКТРИЧЕСКИЙ ПРЕОБРАЗОВАТЕЛЬ | 2015 |
|
RU2605839C2 |
кл | |||
Печь для непрерывного получения сернистого натрия | 1921 |
|
SU1A1 |
Пневматический водоподъемный аппарат-двигатель | 1917 |
|
SU1986A1 |
Авторы
Даты
1992-03-23—Публикация
1990-03-19—Подача