стью, безвредностью, и слабой агглютино- генностью, неабортогенностью.
Сущность изобретения. Новый штамм Br.abortus 21-5 получен из штамма Br.abortus 21 путем пассажирования через организм стельных коров и отселекциони- рован в стабильных Р - формах.
Штамм Br.abortus 21-5 депонирован в лаборатории контроля и стандартизации бруцеллезных и кампилобактериозных препаратов ВГНКИ.
Штамм Br.abortus ВГНКИ № 20-1-ДЕП характеризуется следующими культураль- но-морфологическими и физиолого-биоло- гическими признаками.
Морфологические: клетки штамма 21-5 представляют коккабактерии 1-1,5 мкм в длину , по Граму отрицательны, по Козловскому сохраняют красный цвет, по Романовскому - нежно-фиолетовый.
Культуральные: бактерии штамма 21-5 хорошо растут на глюкозно-глицериновом печеночно-пептонном бульоне и агаре Д и других средах, имеющих нейтральную или слегка щелочную реакцию (рН 6,8-7,2) в аэробных условиях при температуре 37° С. На плотной среде образуют выпуклые, матовые, полупрозрачные колонии.
Биохимические: штамм 21-5 представлен Р - (100%) колониями, при окраске по Уайт-Вилсону реакция с трипафлавином положительна; с Р - сывороткой агглютинируют; сероводород не образует, каталазная активность незначительная, не ферментирует глюкозу, лактозу, маннит, рамнозу, инозит. Растет на среде с содержанием фуксина, а при аналогичном содержании ти- онина рост не отмечается.
Серологические признаки: не вызывает агглютининов и комплементсвязывающих веществ в диагностических титрах. Агглютинируется R-сывороткой.
Биологические признаки: непатогенен, неабортогенен (безвреден), приживаемость на морских свинках при дозе 100 м.к. до 2-х мес., 2 млрд.м.к. - до 3 мес, пассажирован через организм пяти стельных коров и десятикратно через организм морских свинок. Миграцией на привитых животных не обладает.
Иммуногенные признаки: иммуноген- ность в эксперименте на морских свинках составила 63,6-83.3%, на крупном рогатом скоте 75%.
I. Отличительные признаки штамма Бруцелла абортус 21-5:
а) слабая агглютиногенность. При прививках лабораторных животных и крупного рогатого скота не вызывает образования агглютиннов и комплементсвязывающих веществ в диагностических титрах;
б)высокая иммуногенность у морских свинок до 83,3% через 3 месяца, а на крупном рогатом скоте до 75% спустя год после прививок;
в)непатогенен: безвреден (неабортогенен). Приживаемость у морских свинок при дозе 100 м.к. до 2 мес., 2 млрд м.к. до 3 мес;
0 г) от вакцинированных животных на невакцинированных не мигрирует.
II.Отличие штамма Br.abortus 21-5 от близких штаммов
Штамм Br.abortus 21-5 отличается от сла- 5 богглютиногенного штамма Br.abortus 82 меньшей остаточной вирулентностью (отсутствием абортогенности), отсутствием сохранения агглютининов и комплементсвязывающих веществ.
0 Отличается от агглютиногенного штамма № 19 отсутствием агглютиногенности, что позволяет отличать постинфекционные реакции от поствакцинальных.
III.Пределы варьирования признаков 5 (5-10%)
Селекционирован в Р-форме из пятикратно пассажированной через организм стельных коров культуры.Рост на глюкозно- глицериновом МПА наблюдается в виде
0 100% колоний, содержащих Р-формы бру- целл по антигенным свойствам.
П р и м е р 1. Вакцинный штамм Бруцелла абортус 21-5 получен следующим образом. Методом неоднократных воздействий
5 ультрафиолетовыми лучами из вирулентной культуры вначале получен штамм 21. Затем проведен пассаж культуры штамм 21 через организм 5 стельных коров (сроки от 3 до 8,5 мес). Дозы вакцины от 100 млрд (1-я корова),
0 2-3 коровы по 200 млрд, 4-я - 220 млрд, 5-я - 300 млрд. Спустя один месяц от вакцинированных неделей, выделяли культуры штамма Br.abortus, которых изолировали из региональных лимфатических узлов, пред5 лдлаточных и надвыменных. Из 5-го пассажного варианта селекционирован вакцинный штамм 21-5 в Р-форме.
П р и м е р 2. Методика изготовления и контроля вакцины из штамма Бруцелла
0 abortus 21-5. Культуру штамма 21-5 засевают в пробирки с мясопептонным глюкозно- глицериновым агаром, имевшим рН 6,8-7,0. После двухсуточного культивирования в термостате при 37°С в каждую пробирку
5 вносят по 2 мл физраствора и смазывают бактериальную массу. Делают посевы на матровые колбы со скошенным мясо-пеп- тонным глюкозоглицериновым агаром (МПГТА). Поверхность агаровой пластинки тщательно увлажняют засеянной суспензиэй и матровые колбы помещают в термостат. После двухсуточного выдерживания при 37°С колбы вынимают и проводят визуальный осмотр с целью выявления загрязнения посевов. Затем в каждую колбу вносят по 40-50 мл физраствора и тщательно смывают бактериальную массу. Из смыва каждой колбы готовят мазки, окрашивают их по методу Грама, Козловского и микро- скопируют для проверки чистоты смывов. Колбы, в которых обнаруживают постороннюю микрофлору, выбраковывают, а из остальных полученную взвесь сливают в мерный цилиндр для определения общего объема смыва.
При установлении концентрации бру- целл вакционного штамма 21-5 в полученной взвеси используют оптические стандарты мутности.
Доводят концентрацию бруцеллезных клеток до 10 млрд в 1 мл. После этого вакцину расфасовывают в стерильные флаконы по 250 мл, заливают пробки сургучом и хранят в холодильнике при 5°С до употребления.
Помимо оптической устанавливают и биологическую концентрацию вакцины.
Определение проводят путем приготовления последовательных разведений исходной взвеси с оптической концентрацией 10 млрд. м.к. в 1 мл в пробирках с 4,5 мл физраствора до получения конечного разведения .1:100 с последующим посевом 0,1 мл каждого из двух последних разведений (1:100 и 1:1000) на 3-4 чашки Петри с глю- козно-глицериновым агаром из рыбного гидролизата. Посевы выдерживают в термостате при 37°С в течение 4-6 дней, после чего проводят подсчет выросших колоний. Определяютсреднее арифметическое число живых бруцелл, содержащихся в 1 мл каждого разведения. Полученные цифры складывают и делят на 2 (количество разведений). Данное число отражает среднее количество живых клеток, содержащихся в 1 мл приготовленной вакцины.
До употребления вакцину проверяют также на чистоту роста и безвредность. Чистоту
культуры проверяли микроскопическим исследованием мазков, приготовленных из полученной вакцины и окрашенных по методам Грама и Козловского. Кроме того, еще проводится высев на пластины МПГТА в чашки Петри для исключения загрязнения вакцины аэробными микроорганизмами. Из подозреваемых колоний готовят мазки, окрашивают и микроскопируют.
Загрязненность анаэробными микроорганизмами исключается высевом вакцины на среду Китт-Тароцци.
Безвредность проверяют подкожным введением вакцины двум беременным морским свинкам в дозе 1 млрд м.к. с последующим наблюдением за ними и исследованием от них сывороток крови через 2 недели в РА и РСК. Абортов и положительных результатов серологических реакций, как правило, не отмечалось. Данные приведены в таблице.
Тестами для определения диссоциации
служит трипафлавиновая проба, реакция термопреципитации и окраска колоний, выросших на пластине агара в чашках Петри по Уайту и Вилсону.
Трипафлавиновая проба и реакция термопреципитации всегда были положительными.
Окраской колоний кристаллвиолетом по Уайту и Вилсону обнаруживали до 100% шероховатых R-форм колоний.
Как видно из таблицы, штамм Бруцелла абортус 21-5 по иммуногенным свойствам превосходит коммерческий штамм Бруцел- ла абортус 19.
Формула изобретения Штамм бактерий Brucella abortus ВГНКИ № 20-1-ДЕП, используемый для изготовления вакцин против бруцеллеза.
f
Сравнительные данные по иммуногенности противобруцеллезных вакцин
название | год | авторы | номер документа |
---|---|---|---|
ШТАММ BRUCELLA ABORTUS УФ-1 ДЛЯ ПРИГОТОВЛЕНИЯ БИОЛОГИЧЕСКИХ ПРЕПАРАТОВ ДЛЯ ДИАГНОСТИКИ И СПЕЦИФИЧЕСКОЙ ПРОФИЛАКТИКИ БРУЦЕЛЛЕЗА СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ | 2007 |
|
RU2425148C2 |
ВАКЦИНА ПРОТИВ БРУЦЕЛЛЕЗА СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ | 1992 |
|
RU2026081C1 |
ВАКЦИНА ПРОТИВ БРУЦЕЛЛЕЗА КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА | 1997 |
|
RU2113857C1 |
Штамм бактерий BRUceLLa авоRтUS, используемый для приготовления вакцины против бруцеллеза крупного рогатого скота | 1988 |
|
SU1701743A1 |
ВАКЦИНА ПРОТИВ БРУЦЕЛЛЕЗА СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ | 1992 |
|
RU2026343C1 |
ШТАММ БАКТЕРИЙ BRUCELLA ABORTUS, ИСПОЛЬЗУЕМЫЙ ПРИ ПОЛУЧЕНИИ МОНОСПЕЦИФИЧЕСКОЙ СЫВОРОТКИ ДЛЯ ИДЕНТИФИКАЦИИ БРУЦЕЛЛ В R-ФОРМЕ | 1999 |
|
RU2159808C2 |
ШТАММ БАКТЕРИЙ BRUCELLA ABORTUS, ИСПОЛЬЗУЕМЫЙ ДЛЯ ИЗГОТОВЛЕНИЯ ДИАГНОСТИЧЕСКИХ И ПРОФИЛАКТИЧЕСКИХ БИОПРЕПАРАТОВ ПРОТИВ БРУЦЕЛЛЕЗА ЖИВОТНЫХ | 1999 |
|
RU2149183C1 |
ШТАММ БАКТЕРИЙ BRUCELLA ABORTUS, ИСПОЛЬЗУЕМЫЙ ДЛЯ ОПРЕДЕЛЕНИЯ ИММУНОГЕННОЙ АКТИВНОСТИ ВАКЦИН ПРОТИВ БРУЦЕЛЛЕЗА СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ | 1999 |
|
RU2149184C1 |
ВАКЦИНА ПРОТИВ БРУЦЕЛЛЕЗА КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА | 1997 |
|
RU2108110C1 |
СПОСОБ ПОВЫШЕНИЯ ИММУНОГЕННОСТИ ЖИВЫХ ВАКЦИН ИЗ RS (SR) ШТАММОВ БРУЦЕЛЛ | 2008 |
|
RU2391999C2 |
Использование: микробиология, профилактика бруцеллеза, вакцина против бруцеллеза. Сущность изобретения: вакцину готовят из нового штамма Brucella abortus ВГНКИ№20-1-ДЕП. Штамм отличается низкой остаточной вирулентностью отсутствием абортогенности и агглютиногенности. Для получения вакцины штамм выращивают, отделяют клетки, доводят их концентрацию до 10 млрд.кл/мл и расфасовывают. Вакцина по иммуногенным свойствам превосходит вакцинный штамм 19 и не вызывает образования агглютининов, что позволяет постинфекционные реакции от поствакцинальных. 1 табл. (Л С Недостатком прототипа является то, что вакцинный штамм 19 обладает высокими аг- глютиногенными свойствами, вызывает у привитых животных серопозитивные реакции, которые трудно отличить от серопози- тивности у зараженных животных и вызывает аборты у стельных коров. Цель изобретения - получение штамма бруцелл для создания вакцины, обладающей высокой стабильностью, иммуногеннох| о XI ю о
Печь для непрерывного получения сернистого натрия | 1921 |
|
SU1A1 |
Ромахов В.А., Клочков А,А | |||
и др | |||
Счетная таблица | 1919 |
|
SU104A1 |
Труды ВИЗ В, 1985, т | |||
Способ приготовления сернистого красителя защитного цвета | 1915 |
|
SU63A1 |
Способ восстановления хромовой кислоты, в частности для получения хромовых квасцов | 1921 |
|
SU7A1 |
Аппарат для очищения воды при помощи химических реактивов | 1917 |
|
SU2A1 |
и др | |||
Машина для разделения сыпучих материалов и размещения их в приемники | 0 |
|
SU82A1 |
Научные труды Казанского ветеринарного института, 1980, т | |||
Способ обделки поверхностей приборов отопления с целью увеличения теплоотдачи | 1919 |
|
SU135A1 |
Приспособление для автоматической односторонней разгрузки железнодорожных платформ | 1921 |
|
SU48A1 |
З.Вершилова П.А., Чернышева М.И | |||
Испытание иммунитета у морских свинок, вак- цинированных Br.abortus 19 В А к высоковирулентной культуре Br.suis 1330 | |||
- Ветеринария, 1959, № 12, с | |||
Прибор для равномерного смешения зерна и одновременного отбирания нескольких одинаковых по объему проб | 1921 |
|
SU23A1 |
Очаг для массовой варки пищи, выпечки хлеба и кипячения воды | 1921 |
|
SU4A1 |
и др | |||
Сравнительное испытание иммуногенных и анти- генных свойств противобруцеллезных вакцин из различных штаммов, Труды Уз | |||
НИВИ, 1978, т | |||
Видоизменение прибора с двумя приемами для рассматривания проекционные увеличенных и удаленных от зрителя стереограмм | 1919 |
|
SU28A1 |
Печь для непрерывного получения сернистого натрия | 1921 |
|
SU1A1 |
Рогульчатое веретено | 1922 |
|
SU142A1 |
Изобретение относится к микробиологии и предназначено для получения противобруцеллезной вакцины | |||
Счетная таблица | 1919 |
|
SU104A1 |
Счетная таблица | 1919 |
|
SU104A1 |
Машина для разделения сыпучих материалов и размещения их в приемники | 0 |
|
SU82A1 |
Наиболее близким по технической сущности и достигаемому эффекту является штамм Brucella abortus. |
Авторы
Даты
1992-09-15—Публикация
1990-08-21—Подача